| 摘要 | 第3-10页 |
| Abstract | 第10-16页 |
| 缩略词表 | 第17-24页 |
| 第一章 文献综述和选题依据 | 第24-52页 |
| 1.1 运动与缺血心脏保护 | 第24-27页 |
| 1.1.1 心肌梗死的病理性组织重塑 | 第24-25页 |
| 1.1.2 运动与心梗心脏保护研究 | 第25-27页 |
| 1.2 运动与骨骼肌萎缩 | 第27-29页 |
| 1.2.1 心梗导致骨骼肌发生萎缩现象 | 第27页 |
| 1.2.2 心梗导致骨骼肌萎缩的机制研究 | 第27-28页 |
| 1.2.3 运动改善心梗导致的骨骼肌萎缩 | 第28-29页 |
| 1.3 运动与正常心脏心肌细胞肥大与增殖 | 第29-30页 |
| 1.3.1 运动促进心肌细胞肥大 | 第29-30页 |
| 1.3.2 运动促进正常心肌细胞增殖 | 第30页 |
| 1.4 运动与炎性、氧化应激 | 第30-32页 |
| 1.4.1 运动与机体炎性反应 | 第30-31页 |
| 1.4.2 运动与机体氧化应激 | 第31-32页 |
| 1.5 运动与骨骼肌内分泌 | 第32-33页 |
| 1.5.1 骨骼肌分泌的细胞因子 | 第32页 |
| 1.5.2 骨骼肌的内分泌效应 | 第32-33页 |
| 1.6 心脏再生能力研究进展 | 第33-38页 |
| 1.6.1 斑马鱼心脏再生研究进展 | 第33-36页 |
| 1.6.2 蝾螈心脏再生研究进展 | 第36-37页 |
| 1.6.3 啮齿类动物心脏再生研究 | 第37页 |
| 1.6.4 人类心脏再生研究进展 | 第37-38页 |
| 1.7 促进心肌再生的主要策略 | 第38-41页 |
| 1.7.1 心肌细胞细胞周期的重新进入 | 第38-39页 |
| 1.7.2 心梗与干细胞修复 | 第39-40页 |
| 1.7.3 非心肌细胞重塑 | 第40-41页 |
| 1.8 心脏NRG1研究进展 | 第41-45页 |
| 1.8.1 心脏NRG1及其受体的生物学表征 | 第41-42页 |
| 1.8.2 NRG1与胚胎心脏发育 | 第42页 |
| 1.8.3 NRG1与心脏生长 | 第42-43页 |
| 1.8.4 NRG1与缺血心脏保护 | 第43-45页 |
| 1.9 骨骼肌NRG1研究进展 | 第45-46页 |
| 1.9.1 NRG1与骨骼肌生长发育及功能调节 | 第45页 |
| 1.9.2 运动对NRG1表达的影响 | 第45-46页 |
| 1.10 Smyd1在骨骼肌和心脏中的作用研究进展 | 第46-48页 |
| 1.10.1 Smyd1的生物学表征及分类 | 第46-47页 |
| 1.10.2 Smyd1与心脏和骨骼肌发育 | 第47-48页 |
| 1.11 选题依据与研究思路 | 第48-52页 |
| 第二章 不同运动方式改善心梗大鼠心功能和骨骼肌萎缩 | 第52-60页 |
| 2.1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 2.1.1 主要仪器和试剂 | 第52页 |
| 2.1.2 实验动物及分组 | 第52页 |
| 2.1.3 大鼠心梗模型制备 | 第52-53页 |
| 2.1.4 心梗大鼠运动方案选择 | 第53页 |
| 2.1.5 血流动力学指标测定、取材与样品处理 | 第53页 |
| 2.1.6 CS检测 | 第53-54页 |
| 2.1.7 图像处理与数据分析 | 第54页 |
| 2.2 实验结果 | 第54-57页 |
| 2.2.1 心梗大鼠存活率统计和心功能测定结果 | 第54页 |
| 2.2.2 心肌组织Masson染色观察与分析结果 | 第54-55页 |
| 2.2.3 大鼠骨骼肌质量和骨骼肌细胞横截面积测定结果 | 第55-56页 |
| 2.2.4大鼠比目鱼肌组织CS活性测定结果 | 第56-57页 |
| 2.3 分析与讨论 | 第57-58页 |
| 2.4 小结 | 第58-60页 |
| 第三章 持续有氧运动促进损伤心肌修复及NRG1作用探讨 | 第60-92页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第60-67页 |
| 3.1.1 主要仪器和试剂 | 第60-61页 |
| 3.1.2 大鼠实验分组 | 第61页 |
| 3.1.3 大鼠运动方案及药物干预 | 第61页 |
| 3.1.4 大鼠实验样本处理 | 第61页 |
| 3.1.5 大鼠心肌组织免疫组织化学检测 | 第61-62页 |
| 3.1.6 大鼠心肌组织荧光免疫组织化学检测 | 第62页 |
| 3.1.7 大鼠心肌组织Western Blot实验 | 第62页 |
| 3.1.8 大鼠心肌组织DHE染色 | 第62-63页 |
| 3.1.9 大鼠心肌组织细胞凋亡检测 | 第63页 |
| 3.1.10 斑马鱼饲养、产卵与收集 | 第63页 |
| 3.1.11 斑马鱼心室损伤模型的建立 | 第63-64页 |
| 3.1.12 心脏特异过表达NRG1斑马鱼模型 | 第64-65页 |
| 3.1.13 斑马鱼实验样本处理 | 第65页 |
| 3.1.14 斑马鱼荧光免疫组织化学检测 | 第65页 |
| 3.1.15 斑马鱼心肌组织总RNA提取及PCR实验方法 | 第65-67页 |
| 3.1.16 数据统计与分析 | 第67页 |
| 3.2 实验结果 | 第67-85页 |
| 3.2.1 持续有氧运动促进心梗心脏修复及NRG1/ErbB通路的作用 | 第67-76页 |
| 3.2.2 心脏特异NRG1过表达诱导正常斑马鱼心脏肥大与心肌细胞增殖 | 第76-80页 |
| 3.2.3 斑马鱼心脏特异性NRG1过表达促进缺损心脏再生 | 第80-85页 |
| 3.3 分析和讨论 | 第85-90页 |
| 3.3.1 运动可促进心梗大鼠心肌修复和心肌细胞增殖 | 第85-87页 |
| 3.3.2 运动可促进心梗大鼠心肌中NRG1/ErbB信号的激活 | 第87-88页 |
| 3.3.3 NRG1诱导心脏肥大 | 第88-90页 |
| 3.3.4 NRG1促进心脏损伤后再生的可能机制 | 第90页 |
| 3.4 小结 | 第90-92页 |
| 第四章 抗阻训练上调NRG1表达改善心梗大鼠骨骼肌萎缩 | 第92-116页 |
| 4.1. 材料与方法 | 第92-95页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第92页 |
| 4.1.2 大鼠实验分组 | 第92页 |
| 4.1.3 大鼠药物干预与抗阻训练方案 | 第92-93页 |
| 4.1.4 大鼠组织样本处理 | 第93页 |
| 4.1.5 大鼠骨骼肌组织DHE染色 | 第93页 |
| 4.1.6 大鼠骨骼肌组织酶活性检测 | 第93页 |
| 4.1.7 大鼠骨骼肌组织荧光免疫组化 | 第93页 |
| 4.1.8 大鼠心肌组织免疫组织化学 | 第93页 |
| 4.1.9 大鼠心肌和骨骼肌组织Western Blot实验 | 第93-94页 |
| 4.1.10 斑马鱼的饲养与所用斑马鱼系 | 第94页 |
| 4.1.11 斑马鱼胚胎的处理 | 第94页 |
| 4.1.12 sgRNA制备 | 第94-95页 |
| 4.1.13 斑马鱼胚胎显微注射 | 第95页 |
| 4.1.14 斑马鱼胚胎免疫荧光染色 | 第95页 |
| 4.1.15 数据统计与分析 | 第95页 |
| 4.2 实验结果 | 第95-108页 |
| 4.2.1 骨骼肌注射rhNRG1改善心梗大鼠骨骼肌萎缩和心功能 | 第95-98页 |
| 4.2.2 敲除smyd1和hsp90α基因对斑马鱼骨骼肌肌小节组装产生影响 | 第98-100页 |
| 4.2.3 抗阻训练上调心梗骨骼肌NRG1表达改善骨骼肌萎缩的可能机制 | 第100-104页 |
| 4.2.4 抗阻训练上调NRG1表达与心脏保护 | 第104-108页 |
| 4.3 分析和讨论 | 第108-113页 |
| 4.3.1 NRG1参与改善心梗大鼠骨骼肌萎缩及可能机制分析 | 第108-109页 |
| 4.3.2 抗阻训练上调NRG1表达改善心梗大鼠骨骼肌萎缩 | 第109-111页 |
| 4.3.3 抗阻训练对心梗心脏的保护效应 | 第111-112页 |
| 4.3.4 抗阻训练上调骨骼肌NRG1蛋白水平与心梗心脏的保护效应相关 | 第112-113页 |
| 4.4 小结 | 第113-116页 |
| 第五章 全文总结与展望 | 第116-124页 |
| 参考文献 | 第124-154页 |
| 致谢 | 第154-158页 |
| 攻读博士学位期间参与完成的课题和发表的学术论文 | 第158-160页 |
