| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 引言 | 第10-14页 |
| 第一部分 糖尿病大鼠视网膜PGC-1α基因与蛋白的表达 | 第14-30页 |
| 材料和方法 | 第14-22页 |
| 1. 主要材料、试剂 | 第14-15页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.2.1 实验模型建立 | 第14页 |
| 1.2.2 RT-PCR | 第14页 |
| 1.2.3 Western blot | 第14-15页 |
| 2. 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 3. 实验方法 | 第16-22页 |
| 3.1 实验分组 | 第16-17页 |
| 3.2 实验模型建立 | 第17页 |
| 3.3 大鼠视网膜组织分离 | 第17页 |
| 3.4 检测内容 | 第17页 |
| 3.5 实时荧光定量PCR(RT-PCR)测定mRNA | 第17-20页 |
| 3.5.1 原理 | 第17-18页 |
| 3.5.2 步骤 | 第18-20页 |
| 3.6 Western blot测定蛋白表达 | 第20-22页 |
| 3.6.1 原理 | 第20页 |
| 3.6.2 步骤 | 第20-22页 |
| 4. 数据分析方法 | 第22页 |
| 4.1 实验模型 | 第22页 |
| 4.2 RT-PCR实验 | 第22页 |
| 实验结果 | 第22-30页 |
| 1. 糖尿病代谢记忆大鼠模型 | 第22-25页 |
| 1.1 一般性指标 | 第22-23页 |
| 1.2 各实验组大鼠体重 | 第23-24页 |
| 1.3 各实验组大鼠血糖 | 第24-25页 |
| 2. 糖尿病大鼠视网膜组织PGC-1α、SOD2 mRNA表达水平 | 第25-28页 |
| 2.1 糖尿病大鼠视网膜组织PGC-1α表达水平 | 第25-27页 |
| 2.2 糖尿病大鼠视网膜组织SOD2 mRNA表达水平 | 第27-28页 |
| 3. 糖尿病大鼠视网膜组织PGC-1α、MnSOD蛋白表达水平 | 第28-30页 |
| 3.1 糖尿病大鼠视网膜组织PGC-1α蛋白表达水平 | 第28-29页 |
| 3.2 糖尿病大鼠视网膜组织MnSOD蛋白表达水平 | 第29-30页 |
| 第二部分 糖尿病大鼠视网膜PPARGC1A启动子区表观遗传学改变 | 第30-37页 |
| 材料和方法 | 第30-34页 |
| 1. 主要材料、试剂 | 第30页 |
| 2. 主要仪器设备 | 第30页 |
| 3. 实验方法 | 第30-34页 |
| 3.1 原理 | 第30页 |
| 3.2 PPARGC1A基因启动子区生物信息学分析 | 第30-31页 |
| 3.3 步骤 | 第31-34页 |
| 4. 数据分析方法 | 第34页 |
| 实验结果 | 第34-37页 |
| 1. 各CpG位点甲基化水平 | 第34-36页 |
| 2. 各实验组大鼠视网膜组织PPARGC1A启动子区甲基化水平 | 第36-37页 |
| 讨论 | 第37-43页 |
| 1. 糖尿病代谢记忆动物模型的建立 | 第37-38页 |
| 2. PGC-1α与氧化应激 | 第38-39页 |
| 3. 表观遗传学修饰与糖尿病视网膜病变代谢记忆 | 第39-40页 |
| 4. PPARGC1A启动子区甲基化与糖尿病视网膜病变代谢记忆 | 第40-41页 |
| 5. 研究的创新性 | 第41页 |
| 6. 研究的局限性 | 第41-42页 |
| 7. 展望 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 综述 | 第48-60页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 缩略词表 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
