| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 综述 | 第12-20页 |
| 1 植物线虫的抗氧化系统 | 第12-15页 |
| 1.1 过氧化氢酶 | 第13-14页 |
| 1.2 超氧化物歧化酶 | 第14-15页 |
| 1.3 抗氧化酶体系的协同作用 | 第15页 |
| 2 谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)系统 | 第15-17页 |
| 3 过氧化物还原酶(PRX)系统 | 第17-19页 |
| 4 研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 第二章 谷胱甘肽过氧化物酶基因(DdGpx)的原核表达 | 第20-33页 |
| 1 材料方法 | 第20-28页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.1 供试材料 | 第20页 |
| 1.1.2 试剂 | 第20-21页 |
| 1.2 方法 | 第21-28页 |
| 1.2.1 mRNA的提取 | 第21-22页 |
| 1.2.2 第一链cDNA的合成 | 第22-23页 |
| 1.2.3 马铃薯腐烂茎线虫Gpx(DdGpx)阅读框克隆 | 第23-25页 |
| 1.2.4 DdGpx原核表达载体构建 | 第25-26页 |
| 1.2.5 重组Dd-GPX蛋白表达条件优化及鉴定 | 第26-28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-31页 |
| 2.1 Dd-Gpx阅读框克隆与构建表达载体 | 第28-29页 |
| 2.2 重组Dd-GPX蛋白表达条件优化及鉴定 | 第29-31页 |
| 3 小结 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-33页 |
| 第三章 马铃薯腐烂茎线虫2-Cys Prx的原核表达 | 第33-43页 |
| 1 材料方法 | 第33-38页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 1.1.1 供试材料 | 第33页 |
| 1.1.2 试剂 | 第33-34页 |
| 1.2 方法 | 第34-38页 |
| 1.2.1 mRNA的提取 | 第34页 |
| 1.2.2 第一链cDNA的合成 | 第34页 |
| 1.2.3 马铃薯腐烂茎线虫DdPrx阅读框克隆 | 第34-35页 |
| 1.2.4 DdPrx原核表达载体构建 | 第35-37页 |
| 1.2.5 重组Dd-PRX蛋白表达条件优化及鉴定 | 第37页 |
| 1.2.6 重组Dd-PRX蛋白大量表达 | 第37页 |
| 1.2.7 重组Dd-PRX蛋白纯化及浓度测定 | 第37-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-41页 |
| 2.1 Dd-Prx原核表达载体构建 | 第38-39页 |
| 2.2 重组Dd-PRX蛋白表达与纯化条件优化 | 第39-41页 |
| 3 小结 | 第41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 2-Cys PRX抑制剂高通量离体筛选体系的建立 | 第43-51页 |
| 1 材料和方法 | 第43-45页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
| 1.1.1 供试材料 | 第43-44页 |
| 1.1.2 试剂 | 第44页 |
| 1.2 方法 | 第44-45页 |
| 1.2.1 Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系条件优化及重组Dd-PRX蛋白活性检测 | 第44-45页 |
| 1.2.2 Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系的离体抑制活性测定 | 第45页 |
| 1.2.3 Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系的活体验证 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-48页 |
| 2.1 Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系条件优化 | 第45页 |
| 2.2 重组Dd-PRX蛋白活性检测 | 第45-46页 |
| 2.3 重组Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系的离体抑制活性测定 | 第46页 |
| 2.4 Dd-PRX抑制剂高通量离体筛选体系的活体验证 | 第46-48页 |
| 3 小结 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 第五章 全文总结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 英文缩略表 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
