| 中文摘要 | 第8-13页 |
| Abstract | 第13-19页 |
| 英文缩略语说明 | 第20-22页 |
| 第一部分 重组腺病毒载体的扩增及其感染人喉癌细胞Hep-2后p16蛋白的表达情况 | 第22-40页 |
| 前言 | 第22-25页 |
| 材料与方法 | 第25-33页 |
| 结果 | 第33-35页 |
| 1 重组腺病毒扩增后滴度检测 | 第33页 |
| 2 重组腺病毒感染人喉癌细胞Hep-2后p16蛋白的表达 | 第33-35页 |
| 2.1 流式细胞术检测p16蛋白的表达 | 第33-34页 |
| 2.2 Western blot检测p16蛋白的表达 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-37页 |
| 小结 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 第二部分 野生型p16蛋白对人喉癌细胞Hep-2体外生长和体内生长的影响 | 第40-67页 |
| 前言 | 第40-42页 |
| 材料与方法 | 第42-51页 |
| 结果 | 第51-59页 |
| 1 体外实验结果 | 第51-57页 |
| 1.1 Ad-p16抑制人喉癌细胞Hep-2的体外增殖(CCK-8法) | 第51-52页 |
| 1.2 Ad-p16促进人喉癌细胞Hep-2的细胞凋亡 | 第52-55页 |
| 1.2.1 流式细胞仪检测人喉癌细胞Hep-2的细胞凋亡 | 第52-54页 |
| 1.2.2 电子显微镜下观察人喉癌细胞Hep-2的细胞凋亡形态 | 第54页 |
| 1.2.3 Q-PCR检测人喉癌细胞Hep-2中凋亡相关基因的表达情况 | 第54-55页 |
| 1.3 Ad-p16影响人喉癌细胞Hep-2的细胞周期 | 第55-57页 |
| 1.3.1 流式细胞仪检测人喉癌细胞Hep-2的细胞周期 | 第55-57页 |
| 1.3.2 Q-PCR检测人喉癌细胞Hep-2中细胞周期相关基因的表达情况 | 第57页 |
| 2 体内实验结果 | 第57-59页 |
| 2.1 采用瘤内注射重组腺病毒后各组小鼠肿瘤生长趋势 | 第57-58页 |
| 2.2 Tunnel法检测肿瘤组织中细胞凋亡情况 | 第58-59页 |
| 讨论 | 第59-63页 |
| 小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 第三部分 野生型p16蛋白对人喉癌细胞Hep-2与NK细胞之间相互作用的影响 | 第67-89页 |
| 前言 | 第67-71页 |
| 材料与方法 | 第71-78页 |
| 结果 | 第78-82页 |
| 1 Ad-p16增加Hep-2细胞对NK细胞杀伤的敏感性 | 第78页 |
| 2 Ad-p16影响Hep-2细胞表面NK细胞受体配体的表达 | 第78-79页 |
| 3 Ad-p16影响Hep-2多种细胞因子的表达 | 第79-80页 |
| 3.1 Q-PCR检测Hep-2中多种细胞因子的基因表达情况 | 第79-80页 |
| 3.2 ELISA法检测Hep-2细胞培养上清中TGF-β的分泌情况 | 第80页 |
| 4 表达p16的Hep-2细胞培养上清具有促进NK细胞杀伤肿瘤细胞的作用 | 第80-81页 |
| 5 Ad-p16抑制Hep-2细胞TGF-β的分泌是增强NK细胞杀伤活性的重要因素 | 第81-82页 |
| 讨论 | 第82-85页 |
| 小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 结论及研究前景 | 第89-90页 |
| 攻读学位期间发表的学位论文和论著 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 外文论文一(已发表) | 第92-97页 |
| 外文论文二(待发表) | 第97-105页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第105页 |
