| 中文摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 英文缩略词（Abbreviation） | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 实验一 威灵仙总皂苷对AA大鼠模型的保护作用 | 第17-45页 |
| 1 材料和方法 | 第17-29页 |
| ·实验动物 | 第17-18页 |
| ·实验药物 | 第18页 |
| ·试剂 | 第18页 |
| ·仪器 | 第18-19页 |
| ·方法 | 第19-29页 |
| ·佐剂性关节炎大鼠模型建立及给药方案 | 第19页 |
| ·动物行为和体质量监测 | 第19页 |
| ·TSC对AA大鼠足肿胀度的影响 | 第19页 |
| ·TSC对模型大鼠关节炎指数评分的影响 | 第19-20页 |
| ·TSC对踝关节组织病理学的影响 | 第20-21页 |
| ·TSC对大鼠血清IL-6、IL-10 的含量的影响 | 第21-22页 |
| ·免疫组化法检测滑膜组织中p-JAK2、p-STAT3 蛋白表达 | 第22-23页 |
| ·实时荧光定量PCR检测大鼠滑膜组织中JAK2、STAT3mRNA表达 | 第23-26页 |
| ·Western blot 法检测大鼠滑膜组织中 p-JAK2、JAK2、p-STAT3、STAT3 的蛋白相对表达 | 第26-29页 |
| 2 统计学分析 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-36页 |
| ·动物行为状态和体质量监测 | 第29-30页 |
| ·TSC对AA大鼠足趾肿胀度的影响 | 第30-31页 |
| ·TSC对AA大鼠多发性关节炎指数评分的影响 | 第31页 |
| ·TSC对大鼠踝关节滑膜组织病理学的影响 | 第31-32页 |
| ·TSC对AA大鼠血清中IL-6、IL-10 含量的影响 | 第32-33页 |
| ·TSC对滑膜组织中p-JAK2、p-STAT3 蛋白表达的影响 | 第33-34页 |
| ·实时荧光定量PCR检 测大鼠滑膜组织中JAK2、STAT3mRNA表达 | 第34-35页 |
| ·Western blot法检测大鼠滑膜组织中p-JAK2、JAK2、p-STAT3、STAT3 的蛋白表达 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| 参考文献 | 第40-45页 |
| 实验二 威灵仙总皂苷对JAK2/STAT3 通路的调控作用 | 第45-70页 |
| 1 实验材料 | 第45-48页 |
| ·实验动物 | 第45页 |
| ·实验药物 | 第45-46页 |
| ·试剂 | 第46-47页 |
| ·实验仪器 | 第47-48页 |
| 2 实验方法 | 第48-54页 |
| ·AA大鼠模型建立 | 第48页 |
| ·大鼠滑膜组织的采集 | 第48页 |
| ·组织块贴壁培养法培养大鼠滑膜组织细胞 | 第48-49页 |
| ·细胞鉴定 | 第49页 |
| ·倒置相差显微镜 | 第49页 |
| ·波形蛋白（Vimentin）免疫荧光染色 | 第49页 |
| ·MTT法检测滑膜细胞的增殖水平 | 第49页 |
| ·滑膜细胞实验分组 | 第49页 |
| ·MTT法检测滑膜细胞增殖 | 第49页 |
| ·ELISA法测AA-FLS中IL-6 的水平 | 第49-51页 |
| ·实时荧光定量PCR测定FLS中JAK2、STAT3、SOCS3、SHP-1、IL-6mRNA表达 | 第51-53页 |
| ·Western blot法检测JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3、SOCS3、SHP-1 蛋白表达 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54-60页 |
| ·FLS原代培养 | 第54-55页 |
| ·FLS的细胞鉴定 | 第55-56页 |
| ·TSC对RA-FLS增殖的影响 | 第56页 |
| ·ELISA法检测细胞上清液中IL-6 含量表达 | 第56-57页 |
| ·实时荧光定量PCR检测JAK2、STAT3、SOCS3、SHP-1、IL-6 mRNA表达 | 第57-59页 |
| ·western bolt法检测JAK、p-JAK2、STAT3、p-STAT3、SOCS3、SHP-1 蛋白表达 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 综述 | 第70-82页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 个人简介及在学成果 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
