| 目录 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一章 扶正清解方对不同肿瘤细胞增殖的影响 | 第13-20页 |
| 1 材料 | 第13-14页 |
| ·细胞系 | 第13页 |
| ·药物 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13页 |
| ·主要仪器 | 第13-14页 |
| ·常用试剂的配制 | 第14页 |
| 2 方法 | 第14-15页 |
| ·细胞培养 | 第14-15页 |
| ·MTT法检测扶正清解方对不同肿瘤细胞增殖的作用 | 第15页 |
| ·统计学分析 | 第15页 |
| 3 结果 | 第15-18页 |
| ·FZQJ抑制HepG2细胞的生长 | 第15页 |
| ·FZQJ抑制AGS细胞的生长 | 第15页 |
| ·FZQJ抑制Hela细胞的生长 | 第15-16页 |
| ·FZQJ抑制HT-29细胞的生长 | 第16-18页 |
| 4 讨论 | 第18-19页 |
| 5 小结 | 第19-20页 |
| 第二章 基于线粒体通路扶正清解方诱导肝癌细胞HepG2凋亡的机制研究 | 第20-36页 |
| 1 材料 | 第20-21页 |
| ·细胞系 | 第20页 |
| ·药物 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| ·主要仪器 | 第21页 |
| ·常用试剂配制 | 第21页 |
| 2 方法 | 第21-28页 |
| ·细胞培养 | 第21-22页 |
| ·倒置显微镜观察细胞形态变化 | 第22页 |
| ·DAPI染色法检测细胞凋亡 | 第22页 |
| ·Annexin V-FITC检测细胞凋亡 | 第22页 |
| ·JC-1检测线粒体膜电位的变化 | 第22页 |
| ·RT-PCR检测Bcl-2、Bax基因表达 | 第22-25页 |
| ·Western blot检测Bcl-2、Bax蛋白表达 | 第25-27页 |
| ·Caspase 9、Caspase 3活性检测 | 第27-28页 |
| ·统计学分析 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-33页 |
| ·HepG2形态变化 | 第28页 |
| ·DAPI染色 | 第28-29页 |
| ·凋亡率的变化 | 第29页 |
| ·线粒体膜电位变化 | 第29-31页 |
| ·Bcl-2和Bax基因表达情况 | 第31-32页 |
| ·Bcl-2和Bax蛋白表达情况 | 第32-33页 |
| ·Caspase-9和Caspase-3活性变化 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 5 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 扶正清解方对H22皮下移植瘤生长和凋亡的影响 | 第36-47页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| ·药物 | 第36页 |
| ·动物 | 第36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| ·常规溶液配制 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-41页 |
| ·动物模型建立 | 第37页 |
| ·实验动物分组及给药 | 第37页 |
| ·取材 | 第37页 |
| ·病理切片HE染色 | 第37-38页 |
| ·TUNEL法测肿瘤组织凋亡 | 第38-39页 |
| ·RT-PCR检测Bcl-2、Bax基因 | 第39-40页 |
| ·Western blot检测 | 第40-41页 |
| ·统计方法 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-44页 |
| ·扶正清解方对肿瘤及小鼠体重的影响 | 第41-42页 |
| ·HE染色结果 | 第42页 |
| ·TUNEL检测结果 | 第42-43页 |
| ·肿瘤组织中Bcl-2和Bax基因表达变化 | 第43-44页 |
| ·肿瘤组织中Bcl-2和Bax蛋白表达变化 | 第44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 第四章 研究总结 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 附录 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 文献综述 | 第55-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 作者简历 | 第62-63页 |
