| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-25页 |
| 1. 睾丸支持细胞的基本特征 | 第11-14页 |
| ·支持细胞结构特点 | 第11-12页 |
| ·支持细胞的增殖分化 | 第12-13页 |
| ·睾丸支持细胞的主要功能 | 第13-14页 |
| 2. 雌激素与雄性生殖能力 | 第14-17页 |
| ·雌激素的来源 | 第14-15页 |
| ·雌激素的信号途径 | 第15-16页 |
| ·雌激素与精子发生 | 第16-17页 |
| ·雌激素与支持细胞增殖 | 第17页 |
| 3. ERK与支持细胞增殖 | 第17-18页 |
| ·ERK信号的激活 | 第17-18页 |
| ·ERK对细胞周期的调节 | 第18页 |
| 4. PI3K/AKT与细胞增殖 | 第18-19页 |
| ·PI3K/AKT信号的激活 | 第18-19页 |
| ·PI3K/AKT对细胞周期的调节 | 第19页 |
| 5. mTOR信号通路与细胞增殖 | 第19-21页 |
| ·mTOR的生物学特性 | 第19页 |
| ·mTOR的上游分子调节 | 第19-20页 |
| ·mTOR的下游靶蛋白S6Ks和4E-BP1 | 第20页 |
| ·mTOR信号通路与细胞增殖生长 | 第20-21页 |
| 6. Skp2与细胞周期调控 | 第21-25页 |
| ·细胞周期调控的分子机制 | 第21-22页 |
| ·Skp2对细胞周期的调节 | 第22-25页 |
| 第二章 引言 | 第25-27页 |
| 第三章 实验材料与方法 | 第27-39页 |
| 1. 实验材料 | 第27-30页 |
| ·实验组织材料 | 第27页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·试剂配制 | 第27-29页 |
| ·主要实验仪器 | 第29-30页 |
| 2. 实验方法 | 第30-37页 |
| ·支持细胞的分离培养 | 第30-31页 |
| ·支持细胞纯度鉴定 | 第31-32页 |
| ·支持细胞增殖 | 第32页 |
| ·流式细胞术 | 第32页 |
| ·蛋白免疫印迹(Western blot) | 第32-35页 |
| ·荧光定量PCR | 第35-36页 |
| ·17β-雌二醇作用不同时间对支持细胞中mTOR磷酸化激活的影响 | 第36页 |
| ·PI3K/Akt和ERK1/2在17β-雌二醇诱导mTOR磷酸化激活中的影响 | 第36页 |
| ·mTOR在17β-雌二醇诱导支持细胞增殖中的影响 | 第36页 |
| ·mTOR在17β-雌二醇促进细胞周期进程中的作用 | 第36页 |
| ·17β-雌二醇诱导Skp2,PCNA,Cyclin D1和Cyclin E1表达中mTOR的调控作用 | 第36-37页 |
| ·17β-雌二醇诱导Rb磷酸化和Emil表达中mTOR的调控作用 | 第37页 |
| 3. 统计分析 | 第37-39页 |
| 第四章 实验结果 | 第39-47页 |
| 1. 支持细胞分离培养和纯度鉴定 | 第39页 |
| 2. RNA的完整性检测 | 第39-40页 |
| 3. 荧光定量PCR标准曲线、扩增曲线和融解曲线分析 | 第40-42页 |
| 4. 17β-雌二醇作用不同时间对支持细胞mTOR磷酸化激活的影响 | 第42页 |
| 5. ERK1/2和PI3K/Akt在17β-雌二醇诱导mTOR磷酸化激活中的影响 | 第42-43页 |
| 6. mTOR在17beta-雌二醇诱导支持细胞增殖和细胞周期进程中的作用 | 第43-44页 |
| 7. mTOR在17β-雌二醇诱导Skp2,PCNA,Cyclin D1和Cyclin E1表达中的作用 | 第44-45页 |
| 8. mTOR在17β-雌二醇诱导Rb磷酸化和Emil表达中的作用 | 第45-47页 |
| 第五章 讨论 | 第47-51页 |
| 第六章 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 在读期间参与的课题和发表的文章 | 第65页 |
