中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
中英文缩略词表 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
第一章 龙须藤多糖提取条件的优化 | 第14-27页 |
目的 | 第14页 |
引言 | 第14页 |
1. 材料 | 第14-15页 |
2. 方法 | 第15-16页 |
·龙须藤多糖的提取 | 第15页 |
·最大吸收波长的选择 | 第15页 |
·标准曲线的制备 | 第15页 |
·多糖提取率的计算 | 第15页 |
·单因素试验 | 第15-16页 |
·响应曲面优化法试验 | 第16页 |
3. 结果 | 第16-26页 |
·最大吸收波长的确定 | 第16-18页 |
·标准曲线的绘制 | 第18页 |
·单因素结果分析 | 第18-21页 |
·响应曲面试验 | 第21-26页 |
4. 讨论 | 第26页 |
5. 结论 | 第26-27页 |
第二章 龙须藤多糖的纯化 | 第27-32页 |
目的 | 第27页 |
引言 | 第27页 |
1. 材料 | 第27-28页 |
2. 方法 | 第28-29页 |
·龙须藤多糖的提取 | 第28页 |
·龙须藤多糖含量的测定 | 第28页 |
·蛋白标准曲线的制备 | 第28页 |
·精密度试验 | 第28页 |
·稳定性试验 | 第28页 |
·回收率试验 | 第28-29页 |
·脱蛋白方法比较试验 | 第29页 |
3. 结果 | 第29-31页 |
·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第29页 |
·蛋白标准曲线的绘制 | 第29-30页 |
·精密度试验 | 第30页 |
·稳定性试验 | 第30页 |
·回收率试验 | 第30页 |
·蛋白去除率与多糖损失率的计算 | 第30-31页 |
4. 讨论 | 第31页 |
5. 结论 | 第31-32页 |
第三章 龙须藤多糖中的单糖组成 | 第32-37页 |
目的 | 第32页 |
引言 | 第32页 |
1. 材料 | 第32页 |
2. 方法 | 第32-34页 |
·龙须藤多糖样品的制备 | 第33页 |
·龙须藤多糖样品的鉴别 | 第33页 |
·单糖PMP衍生化样品的制备 | 第33页 |
·龙须藤多糖衍生化样品的制备 | 第33页 |
·色谱条件 | 第33页 |
·最低检测限的确定 | 第33页 |
·方法学考察 | 第33-34页 |
·多糖中单糖组成测定 | 第34页 |
3. 结果 | 第34-36页 |
·各种单糖的线性回归及最低检测限 | 第34-35页 |
·精密度试验 | 第35页 |
·重复性试验 | 第35页 |
·稳定性试验 | 第35-36页 |
·多糖中单糖组成 | 第36页 |
4. 讨论 | 第36页 |
5. 结论 | 第36-37页 |
第四章 龙须藤多糖对软骨细胞活性的影响 | 第37-53页 |
目的 | 第37页 |
引言 | 第37页 |
1. 材料 | 第37-39页 |
2. 方法 | 第39-44页 |
·软骨细胞的培养及鉴定 | 第39-40页 |
·MTT法检测软骨细胞的活性 | 第40页 |
·流式细胞仪检测软骨细胞的周期分布 | 第40页 |
·RT-PCR检测CyclinD1,CDK4,CDK6的表达 | 第40-43页 |
·Western blot检测CyclinD1,CDK4,CDK6的表达 | 第43页 |
·统计学处理 | 第43-44页 |
3. 结果 | 第44-51页 |
·软骨细胞的鉴定 | 第44页 |
·MTT法检测优化FBS培养软骨细胞的作用浓度 | 第44页 |
·龙须藤多糖干预软骨细胞的形态学观察 | 第44-45页 |
·梯度浓度法优化龙须藤多糖干预软骨细胞活性的量效关系 | 第45-46页 |
·梯度浓度法优化龙须藤多糖干预软骨细胞活性的时效关系 | 第46页 |
·龙须藤多糖干预后各组软骨细胞周期的分布 | 第46-48页 |
·龙须藤多糖干预后各组软骨细胞CyclinD1,CDK4,CDK6mRNA的表达 | 第48-50页 |
·龙须藤多糖干预后各组软骨细胞CyclinD1,CDK4,CDK6蛋白的表达 | 第50-51页 |
4. 讨论 | 第51-52页 |
5. 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
文献综述 | 第58-65页 |
参考文献 | 第63-65页 |
作者简历 | 第65页 |