| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 1 绪论 | 第12-14页 |
| 2 文献综述 | 第14-26页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉萎缩的研究进展 | 第14-20页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉质量及体积变化 | 第14-15页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉形态结构的变化 | 第15页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉功能的变化 | 第15-16页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉蛋白代谢的变化 | 第16-17页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌核与卫星细胞的变化 | 第17-18页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌萎缩的原因 | 第18页 |
| ·失重/模拟失重条件下肌肉萎缩的防治 | 第18-20页 |
| ·力生长因子的研究进展 | 第20-25页 |
| ·MGF 的形成与结构 | 第20-21页 |
| ·MGF 的作用 | 第21-22页 |
| ·MGF 的调控途径研究 | 第22-25页 |
| ·研究内容 | 第25-26页 |
| 3 尾吊影响 MGF、Dystrophin 与 M-Cad 基因表达 | 第26-37页 |
| ·前言 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26-27页 |
| ·实验动物及分组 | 第26-27页 |
| ·主要仪器 | 第27页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-30页 |
| ·大鼠尾吊模型的建立 | 第27页 |
| ·肌肉标本的分离 | 第27-28页 |
| ·实时定量 PCR 检测 | 第28-30页 |
| ·统计学方法 | 第30页 |
| ·实验结果 | 第30-33页 |
| ·尾吊对大鼠骨骼肌 MGF mRNA 表达的影响 | 第30-31页 |
| ·尾吊对大鼠骨骼肌 M-Cad mRNA 表达的影响 | 第31-32页 |
| ·尾吊对大鼠骨骼肌 Dystrophin mRNA 表达的影响 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| ·小结 | 第35-37页 |
| 4 尾吊影响大鼠比目鱼肌 Dystrophin 表达分布以及血清乳酸脱氢酶活性 | 第37-46页 |
| ·前言 | 第37页 |
| ·实验材料 | 第37-38页 |
| ·实验动物及分组 | 第37-38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| ·主要试剂 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·大鼠尾吊模型的建立 | 第38页 |
| ·肌肉标本的分离 | 第38页 |
| ·抽取血清、生化指标测定 | 第38页 |
| ·荧光免疫及图像获取 | 第38-39页 |
| ·采用 Image J 软件进行肌纤维横截面积分析 | 第39-40页 |
| ·统计学方法 | 第40页 |
| ·实验结果 | 第40-43页 |
| ·尾吊对大鼠比目鱼肌肌纤维横截面积的影响 | 第40-41页 |
| ·尾吊对大鼠比目鱼肌 Dystrophin 蛋白分布的影响 | 第41-43页 |
| ·尾吊对大鼠血清 LDH 活性的影响 | 第43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 5 流体剪切力对 IGF-I 选择性剪接调控机制探讨 | 第46-53页 |
| ·前言 | 第46页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·实验细胞 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-51页 |
| ·载体构建与稳定细胞株筛选 | 第47-48页 |
| ·细胞复苏、培养与传代 | 第48页 |
| ·细胞流体剪切力刺激 | 第48-50页 |
| ·实时定量 PCR 检测 | 第50-51页 |
| ·统计学方法 | 第51页 |
| ·实验结果 | 第51页 |
| ·成骨细胞流体剪切结果 | 第51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 6 结论与展望 | 第53-55页 |
| ·全文总结 | 第53页 |
| ·研究结论 | 第53-54页 |
| ·对未来工作的展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-65页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及所取得的研究成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
