| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-40页 |
| ·纳米材料在生化分析中的应用 | 第18-28页 |
| ·纳米材料的特征 | 第18-19页 |
| ·几种重要的纳米材料在生化分析中的应用 | 第19-28页 |
| ·芯片电泳技术概述 | 第28-38页 |
| ·MCE的进样方式 | 第28-29页 |
| ·MCE的检测技术 | 第29-33页 |
| ·MCE在生化分析中的应用 | 第33-38页 |
| ·选题意义及研究内容 | 第38-40页 |
| 第二章 基于纳米金增强荧光偏振的新型核酸内切酶生物传感器研究 | 第40-53页 |
| ·引言 | 第40页 |
| ·实验部分 | 第40-44页 |
| ·仪器与设备 | 第41页 |
| ·试剂与溶液 | 第41页 |
| ·纳米金的制备 | 第41-42页 |
| ·纳米金-双链DNA复合物的制备 | 第42-43页 |
| ·荧光偏振检测 | 第43页 |
| ·可行性考察 | 第43页 |
| ·核酸内切酶活性分析 | 第43-44页 |
| ·配合物cis-[PtCl_2(L)]对EcoRI活性的影响实验 | 第44页 |
| ·芯片电泳分析 | 第44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-51页 |
| ·实验原理 | 第44-45页 |
| ·DNA功能化纳米金的表征 | 第45-46页 |
| ·实验原理的可行性验证 | 第46-47页 |
| ·检测条件的优化 | 第47-49页 |
| ·EcoRI酶活性检测 | 第49页 |
| ·特异性研究 | 第49-50页 |
| ·配合物cis-[PtCl_2(L)]对EcoRI酶活性的影响 | 第50-51页 |
| ·芯片电泳分析对EcoRI酶切割DNA的验证 | 第51页 |
| ·小结 | 第51-53页 |
| 第三章 基于二氧化硅纳米粒子信号放大的荧光偏振适体传感器研究 | 第53-60页 |
| ·引言 | 第53-54页 |
| ·实验部分 | 第54-56页 |
| ·仪器与设备 | 第54页 |
| ·试剂与溶液 | 第54页 |
| ·DNA功能化纳米探针的制备 | 第54-55页 |
| ·荧光偏振检测 | 第55页 |
| ·可行性考察 | 第55页 |
| ·分析物的检测 | 第55-56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-59页 |
| ·实验原理 | 第56页 |
| ·实验原理的可行性验证 | 第56-57页 |
| ·三磷酸腺苷的检测 | 第57-59页 |
| ·传感器的选择性 | 第59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 第四章 基于纳米金荧光猝灭的多元核酸内切酶生物传感器研究 | 第60-75页 |
| ·引言 | 第60页 |
| ·实验部分 | 第60-63页 |
| ·仪器与设备 | 第60-61页 |
| ·试剂与溶液 | 第61页 |
| ·纳米金的制备 | 第61-62页 |
| ·纳米分子信标的制备 | 第62页 |
| ·荧光检测 | 第62页 |
| ·单一核酸内切酶活性分析 | 第62-63页 |
| ·多种核酸内切酶活性分析 | 第63页 |
| ·金属配合物和药物对核酸内切酶活性的影响实验 | 第63页 |
| ·高效液相色谱分析 | 第63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-74页 |
| ·实验原理 | 第63-64页 |
| ·HaeⅢ酶活性检测 | 第64-65页 |
| ·核酸内切酶活性的多元分析 | 第65-68页 |
| ·特异性研究 | 第68-69页 |
| ·金属配合物和药物对核酸内切酶活性的抑制研究 | 第69-72页 |
| ·高效液相色谱分析对核酸内切酶切割DNA的验证 | 第72-74页 |
| ·小结 | 第74-75页 |
| 第五章 基于双荧光猝灭效应的量子点纳米探针检测核酸内切酶的研究 | 第75-88页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·实验部分 | 第76-78页 |
| ·仪器与设备 | 第76页 |
| ·试剂与溶液 | 第76-77页 |
| ·QDs纳米探针的制备 | 第77页 |
| ·荧光检测 | 第77页 |
| ·核酸内切酶活性分析 | 第77-78页 |
| ·相关物质对核酸内切酶活性的影响实验 | 第78页 |
| ·毛细管电泳分析 | 第78页 |
| ·结果与讨论 | 第78-87页 |
| ·实验原理 | 第78-79页 |
| ·QDs纳米探针的构建 | 第79-82页 |
| ·核酸内切酶活性检测 | 第82-84页 |
| ·纳米探针的选择性 | 第84-85页 |
| ·相关物质对核酸内切酶活性的抑制研究 | 第85-86页 |
| ·毛细管电泳分析对核酸内切酶切割DNA的验证 | 第86-87页 |
| ·小结 | 第87-88页 |
| 第六章 芯片电泳激光诱导荧光法测定人血浆中D-酪氨酸的研究 | 第88-98页 |
| ·引言 | 第88页 |
| ·实验部分 | 第88-90页 |
| ·仪器与设备 | 第88-89页 |
| ·试剂与溶液 | 第89-90页 |
| ·人血浆样品的处理 | 第90页 |
| ·衍生过程 | 第90页 |
| ·芯片电泳 | 第90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-97页 |
| ·实验原理 | 第90-91页 |
| ·酪氨酸对映体的手性拆分 | 第91-95页 |
| ·干扰研究 | 第95-96页 |
| ·线性范围、检测限及重现性 | 第96页 |
| ·人血浆中D-酪氨酸的测定 | 第96-97页 |
| ·小结 | 第97-98页 |
| 第七章 芯片电泳在线衍生-化学发光检测巯基类化合物的研究 | 第98-110页 |
| ·引言 | 第98-99页 |
| ·实验部分 | 第99-101页 |
| ·仪器与设备 | 第99-100页 |
| ·试剂与溶液 | 第100页 |
| ·样品处理 | 第100页 |
| ·实验方法 | 第100-101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-109页 |
| ·实验原理 | 第101页 |
| ·在柱衍生条件的优化 | 第101-103页 |
| ·电泳分离条件的优化 | 第103-105页 |
| ·化学发光检测条件的优化 | 第105-107页 |
| ·线性范围、检测限和重现性考察 | 第107页 |
| ·人血浆中巯基类药物的测定 | 第107-109页 |
| ·小结 | 第109-110页 |
| 第八章 芯片电泳竞争免疫激光诱导荧光检测苯巴比妥的研究 | 第110-119页 |
| ·引言 | 第110页 |
| ·实验部分 | 第110-112页 |
| ·仪器与设备 | 第110-111页 |
| ·试剂与溶液 | 第111页 |
| ·样品处理 | 第111页 |
| ·免疫反应 | 第111-112页 |
| ·芯片电泳 | 第112页 |
| ·结果与讨论 | 第112-118页 |
| ·实验原理 | 第112-113页 |
| ·分离条件的优化 | 第113-115页 |
| ·免疫孵育时间的优化 | 第115-116页 |
| ·苯巴比妥的竞争免疫分析 | 第116-117页 |
| ·人血浆样品分析 | 第117-118页 |
| ·小结 | 第118-119页 |
| 第九章 芯片电泳免疫化学发光检测人血清中睾酮的研究 | 第119-129页 |
| ·引言 | 第119-120页 |
| ·实验部分 | 第120-121页 |
| ·仪器与设备 | 第120页 |
| ·试剂与溶液 | 第120页 |
| ·样品处理 | 第120-121页 |
| ·免疫反应 | 第121页 |
| ·实验方法 | 第121页 |
| ·结果与讨论 | 第121-128页 |
| ·实验原理 | 第121-122页 |
| ·电泳分离条件的优化 | 第122-123页 |
| ·化学发光检测条件的优化 | 第123-126页 |
| ·孵育时间的影响 | 第126页 |
| ·线性范围、检测限和重现性考察 | 第126-127页 |
| ·人血清中睾酮的测定 | 第127-128页 |
| ·小结 | 第128-129页 |
| 第十章 芯片电泳多元免疫分析新方法的建立及其应用研究 | 第129-142页 |
| ·引言 | 第129-130页 |
| ·实验部分 | 第130-132页 |
| ·仪器与设备 | 第130页 |
| ·试剂与溶液 | 第130-131页 |
| ·抗体修饰玻璃微珠的制备 | 第131页 |
| ·样品处理 | 第131页 |
| ·实验方法 | 第131-132页 |
| ·结果与讨论 | 第132-140页 |
| ·芯片电泳免疫分析原理 | 第132-133页 |
| ·荧光标记抗原的分离 | 第133-136页 |
| ·初步免疫分析 | 第136-137页 |
| ·竞争免疫分析 | 第137-138页 |
| ·线性范围、检测限和重现性 | 第138-139页 |
| ·样品分析 | 第139-140页 |
| ·小结 | 第140-142页 |
| 结论 | 第142-143页 |
| 参考文献 | 第143-176页 |
| 致谢 | 第176-177页 |
| 攻读博士学位期间主要的研究成果 | 第177-178页 |
