摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-13页 |
第一章 绪论 | 第13-33页 |
·病原学 | 第13-15页 |
·病毒的发现 | 第13-14页 |
·分类地位 | 第14页 |
·理化特性 | 第14页 |
·病毒的增殖特性 | 第14-15页 |
·病毒的分子生物学 | 第15-18页 |
·PCV 的基因组结构 | 第15-16页 |
·PCV 的复制及转录 | 第16-17页 |
·PCV 基因组编码的蛋白及其特征 | 第17-18页 |
·致病机制 | 第18-21页 |
·PCV2 感染猪体内淋巴细胞的变化 | 第18-19页 |
·PCV2 感染猪体内细胞因子的变化 | 第19-20页 |
·PCV2 感染猪体内靶细胞的变化 | 第20页 |
·PCV2 与其他病原的协同致病作用 | 第20-21页 |
·流行病学 | 第21-23页 |
·临床症状及病理变化 | 第23页 |
·PCV2 相关疾病 | 第23-26页 |
·断奶仔猪多系统衰竭综合征 | 第24页 |
·猪皮炎肾病综合征 | 第24页 |
·先天性震颤 | 第24-25页 |
·繁殖障碍 | 第25页 |
·猪呼吸道疾病综合征 | 第25-26页 |
·增生性坏死性肺炎 | 第26页 |
·诊断技术 | 第26-31页 |
·病原学方法 | 第26-29页 |
·病毒抗体检测技术 | 第29-31页 |
·PCV2 感染的防制 | 第31-32页 |
·研究的目的和意义 | 第32-33页 |
第二章 PCV2 重组 CAP 蛋白的表达、纯化与活性鉴定 | 第33-38页 |
·材料与方法 | 第33-35页 |
·材料 | 第33-34页 |
·方法 | 第34-35页 |
·结果 | 第35-37页 |
·重组Cap 蛋白的表达 | 第35-36页 |
·重组蛋白纯化及Western-blot 鉴定结果 | 第36-37页 |
·讨论 | 第37-38页 |
第三章 猪圆环病毒2 型 ELISA 抗体检测方法的建立 | 第38-50页 |
·材料与方法 | 第38-41页 |
·材料 | 第38-39页 |
·方法 | 第39-41页 |
·结果 | 第41-48页 |
·最佳底物显色液及终止液的选择 | 第41-42页 |
·重组蛋白作抗原最适包被浓度的确定 | 第42页 |
·最佳抗原包被条件的确定 | 第42-43页 |
·最佳封闭液的种类及使用浓度的确定 | 第43页 |
·最适封闭时间的确定 | 第43-44页 |
·最佳血清稀释度的确定 | 第44页 |
·最适血清作用时间的确定 | 第44-45页 |
·最适酶标二抗使用浓度的确定 | 第45页 |
·最适的酶标二抗作用时间的确定 | 第45-46页 |
·最适底物反应时间的确定 | 第46页 |
·间接ELISA 方法判定标准的确定 | 第46-47页 |
·间接ELISA 的交叉反应试验 | 第47页 |
·间接ELISA 的敏感性、特异性及符合率试验 | 第47-48页 |
·人工感染试验 | 第48页 |
·讨论 | 第48-50页 |
第四章 猪圆环病毒2 型 ELISA 抗体检测试剂盒的研制及应用 | 第50-60页 |
·材料与方法 | 第50-52页 |
·材料 | 第50-51页 |
·方法 | 第51-52页 |
·结果 | 第52-58页 |
·包被酶标板的保存试验 | 第52-53页 |
·阴阳性对照血清的保存试验 | 第53页 |
·HRP-SPA 的保存试验 | 第53-54页 |
·显色底物保存期试验 | 第54-55页 |
·试剂盒整体保存期试验 | 第55-56页 |
·重复性试验 | 第56-57页 |
·临床血清样品的检测 | 第57-58页 |
·讨论 | 第58-60页 |
结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-68页 |
附录 | 第68-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
作者简历 | 第75页 |