| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 1.文献综述 | 第12-29页 |
| ·杂种纯度鉴定方法的发展历程 | 第12-21页 |
| ·形态鉴定 | 第12-13页 |
| ·物理化学鉴定 | 第13页 |
| ·指纹图谱鉴定 | 第13-21页 |
| ·生化指纹图谱 | 第13-16页 |
| ·蛋白质电泳技术 | 第14-15页 |
| ·同工酶电泳技术 | 第15-16页 |
| ·DNA指纹图谱 | 第16-21页 |
| ·RFLP标记 | 第16-17页 |
| ·RAPD及其相关标记 | 第17-18页 |
| ·AFLP标记 | 第18页 |
| ·SSR标记 | 第18-19页 |
| ·EST-SSR标记 | 第19页 |
| ·ISSR标记 | 第19-20页 |
| ·SRAP标记 | 第20-21页 |
| ·指纹图谱技术在部分葫芦科蔬菜杂种纯度和真伪鉴定中的应用 | 第21-26页 |
| ·黄瓜的相关研究 | 第21-22页 |
| ·西瓜的相关研究 | 第22-23页 |
| ·甜瓜的相关研究 | 第23-25页 |
| ·其他瓜类的相关研究 | 第25-26页 |
| ·分子标记技术在葫芦科作物纯度和真伪鉴定中的问题和应用前景 | 第26-27页 |
| ·存在的问题 | 第26页 |
| ·应用前景 | 第26-27页 |
| ·研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| ·研究的意义 | 第27-28页 |
| ·研究目的 | 第28-29页 |
| 2.EST-SSR标记技术鉴定瓠瓜品种的研究 | 第29-37页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·瓠瓜材料 | 第29页 |
| ·引物 | 第29-30页 |
| ·试剂及仪器 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-33页 |
| ·杂交组合的配制 | 第30页 |
| ·田间试验设计 | 第30页 |
| ·DNA提取及质量检测方法 | 第30-32页 |
| ·DNA的提取 | 第30-31页 |
| ·DNA的检测 | 第31-32页 |
| ·EST-SSR标记PCR反应优化设计 | 第32-33页 |
| ·PCR反应体系的优化 | 第32页 |
| ·引物的筛选 | 第32页 |
| ·EST-SSR-PCR扩增程序 | 第32-33页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第33页 |
| ·结果 | 第33-36页 |
| ·EST-SSR反应体系的优化 | 第33-34页 |
| ·甜瓜、黄瓜EST-SSR标记在瓠瓜上的通用性 | 第34页 |
| ·EST-SSR多态性引物的筛选及多态性分析 | 第34-36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| ·EST-SSR反应稳定性及影响因素 | 第36页 |
| ·EST-SSR标记在瓠瓜杂种鉴定上的应用 | 第36-37页 |
| 3.SRAP标记技术鉴定瓠瓜品种的研究 | 第37-50页 |
| ·材料 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-40页 |
| ·PCR反应体系的优化和建立 | 第37-38页 |
| ·正交试验 | 第37-38页 |
| ·单因素试验 | 第38页 |
| ·引物的筛选 | 第38-39页 |
| ·PCR扩增程序 | 第39页 |
| ·扩增产物检测技术的优化和建立 | 第39-40页 |
| ·结果与分析 | 第40-46页 |
| ·SRAP反应体系的优化 | 第40-44页 |
| ·正交试验结果分析 | 第40-41页 |
| ·单因素试验结果分析 | 第41-44页 |
| ·DNA模板用量 | 第41-42页 |
| ·Mg~(2+)用量 | 第42页 |
| ·dNTPs用量 | 第42-43页 |
| ·TaqDNA聚合酶用量 | 第43页 |
| ·引物用量 | 第43-44页 |
| ·SRAP-PCR扩增反应体系的确立 | 第44页 |
| ·扩增产物检测技术的优化和建立 | 第44-45页 |
| ·多态性引物的筛选及其多态性分析 | 第45-46页 |
| ·讨论 | 第46-50页 |
| ·SRAP反应稳定性及影响因素 | 第46-47页 |
| ·正交试验设计和单因素试验在PCR反应体系优化上的比较 | 第47-48页 |
| ·SRAP标记在瓠瓜杂种鉴定上的应用 | 第48-50页 |
| 4.ISSR标记技术鉴定瓠瓜品种的研究 | 第50-59页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·方法 | 第50-52页 |
| ·PCR反应体系优化设计 | 第50-51页 |
| ·引物的筛选 | 第51页 |
| ·PCR扩增程序的优化 | 第51-52页 |
| ·扩增产物检测技术的优化和建立 | 第52页 |
| ·结果与分析 | 第52-57页 |
| ·ISSR反应体系的优化 | 第52-55页 |
| ·DNA模板用量对ISSR-PCR的影响 | 第52-53页 |
| ·Mg~(2+)浓度对ISSR-PCR的影响 | 第53页 |
| ·dNTPs用量对ISSR-PCR的影响 | 第53-54页 |
| ·TaqDNA聚合酶用量对ISSR-PCR的影响 | 第54页 |
| ·引物用量对ISSR-PCR的影响 | 第54-55页 |
| ·优化后的反应体系 | 第55页 |
| ·扩增程序的优化 | 第55页 |
| ·扩增产物检测技术的优化和建立 | 第55-56页 |
| ·多态性引物的筛选及其多态性分析 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| ·ISSR反应稳定性及影响因素 | 第57-58页 |
| ·ISSR标记在瓠瓜杂种鉴定上的应用 | 第58-59页 |
| 5.RAPD标记技术鉴定瓠瓜品种的研究 | 第59-68页 |
| ·材料 | 第59页 |
| ·瓠瓜材料 | 第59页 |
| ·引物 | 第59页 |
| ·试剂及仪器 | 第59页 |
| ·方法 | 第59-61页 |
| ·RAPD标记PCR反应优化设计 | 第59-61页 |
| ·PCR反应体系的优化 | 第59-60页 |
| ·引物的筛选 | 第60页 |
| ·PCR扩增程序 | 第60页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第60-61页 |
| ·结果 | 第61-65页 |
| ·RAPD反应体系的优化 | 第61-62页 |
| ·Mg~(2+)浓度对RAPD-PCR反应体系的影响 | 第61页 |
| ·DNA模板用量对RAPD-PCR的影响 | 第61-62页 |
| ·RAPD-PCR最佳反应体系的建立 | 第62页 |
| ·RAPD多态性引物的筛选及多态性分析 | 第62-64页 |
| ·DNA指纹图谱类型的建立 | 第64-65页 |
| ·讨论 | 第65-68页 |
| ·RAPD反应稳定性及影响因素 | 第65-66页 |
| ·RAPD标记在瓠瓜杂种鉴定上的应用 | 第66页 |
| ·瓠瓜杂种鉴定的分子标记选择问题 | 第66-68页 |
| 6.结论 | 第68-70页 |
| ·四种分子标记最佳反应体系的建立 | 第68页 |
| ·四种分子标记多态性引物分析 | 第68-69页 |
| ·几种分子标记技术在瓠瓜杂种鉴定上的优劣比较 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-78页 |
| 附录 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
