| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 1 研究背景 | 第11-12页 |
| 2 选题依据 | 第12页 |
| 3 研究方案 | 第12-13页 |
| 4 研究目的和意义 | 第13页 |
| 参考文献 | 第13-15页 |
| 1 文献综述 | 第15-53页 |
| ·2型糖尿病血管内皮细胞功能紊乱 | 第15-24页 |
| ·糖尿病及其并发症概述 | 第15-17页 |
| ·2型糖尿病血管内皮细胞功能异常 | 第17-18页 |
| ·2型糖尿病血管内皮细胞功能紊乱的机制 | 第18-24页 |
| ·抗氧化应激内皮保护策略 | 第24-28页 |
| ·传统抗氧化制剂 | 第25页 |
| ·具有抗氧化作用的多效性药物 | 第25-26页 |
| ·新型抗氧化剂 | 第26-28页 |
| ·Tanis/SelS/VIMP与炎症、应激及相关疾病的关系 | 第28-33页 |
| ·Tanis/SelS/VIMP的发现、结构及体内分布 | 第28-30页 |
| ·Tanis/SelS/VIMP的生物学作用 | 第30-33页 |
| ·窖蛋白-1(Caveolin-1)与血管内皮功能的相关研究进展 | 第33-41页 |
| ·Caveolin-1的结构与生物学功能 | 第33-35页 |
| ·Caveolin-1与内皮细胞功能 | 第35-38页 |
| ·Caveolin-1与内皮功能相关的信号转导通路 | 第38-41页 |
| ·前景及展望 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-53页 |
| 2 2型糖尿病患者脂肪组织SelS mRNA表达与胰岛素抵抗和血清淀粉样蛋白A的相关性研究 | 第53-69页 |
| ·实验材料及设备 | 第54-55页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·实验设备 | 第54-55页 |
| ·研究方法 | 第55-57页 |
| ·研究对象 | 第55页 |
| ·清生化学指标测定 | 第55页 |
| ·Homa-IR | 第55页 |
| ·提取总RNA及扩增SelS基因片段 | 第55-57页 |
| ·测序 | 第57页 |
| ·统计学方法 | 第57页 |
| ·研究结果 | 第57-62页 |
| ·两组受试者临床指标比较 | 第57-58页 |
| ·大网膜脂肪组织中SelS电泳结果 | 第58页 |
| ·基因测序结果 | 第58-59页 |
| ·SelS mRNA表达与BMI的相关性 | 第59页 |
| ·SelS mRNA表达与Homa-IR及血清SAA水平的关系 | 第59-61页 |
| ·SelS mRNA表达、血清CRP、SAA水平的关系 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 3 真核表达载体pLNCX2-SelS的构建及鉴定 | 第69-86页 |
| ·实验材料及设备 | 第69-71页 |
| ·实验材料 | 第69-71页 |
| ·实验设备 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-77页 |
| ·酶切位点选取及引物设计 | 第71-72页 |
| ·提取人脂肪组织中总RNA | 第72页 |
| ·RT-PCR扩增SelS基因片段 | 第72-74页 |
| ·构建真核表达载体pLNCX2-SelS | 第74页 |
| ·真核表达载体pLNCX2-SelS鉴定 | 第74-77页 |
| ·统计学处理 | 第77页 |
| ·结果 | 第77-83页 |
| ·电泳结果显示提取的总RNA | 第77-78页 |
| ·RT-PCR反应扩增SelS基因产物 | 第78页 |
| ·纯化目的基因 | 第78-79页 |
| ·PCR鉴定pMD18-SelS | 第79页 |
| ·DNA测序分析鉴定pMD18-SelS | 第79页 |
| ·Xho Ⅰ/Cla Ⅰ酶切鉴定pMD18-SelS并回收目的基因 | 第79页 |
| ·PCR和DNA序列分析鉴定真核表达载体pLNCX2-SelS | 第79-81页 |
| ·转染鉴定 | 第81-83页 |
| ·讨论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-86页 |
| 4 SelS高表达保护内皮细胞免于H_2O_2诱导的细胞损伤及机制研究 | 第86-104页 |
| ·实验材料及设备 | 第86-89页 |
| ·实验材料 | 第86-88页 |
| ·实验设备 | 第88-89页 |
| ·实验方法 | 第89-92页 |
| ·H_2O_2对不同转染组细胞损伤效应的比较 | 第89-90页 |
| ·不同转染组细胞H_2O_2损伤前后Caveolin-1的变化 | 第90-92页 |
| ·统计学处理 | 第92页 |
| ·实验结果 | 第92-99页 |
| ·各组细胞形态学变化 | 第92-93页 |
| ·各组细胞的增殖情况 | 第93-94页 |
| ·各组细胞上清中MDA含量比较 | 第94-95页 |
| ·各组细胞上清中SOD活力测定 | 第95-96页 |
| ·各组Caveolin-1表达水平的变化 | 第96-99页 |
| ·讨论 | 第99-102页 |
| 参考文献 | 第102-104页 |
| 结论与创新 | 第104-105页 |
| 展望 | 第105-106页 |
| 附录A 附图 | 第106-108页 |
| 附录B 缩略语 | 第108-111页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112-114页 |
