| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 致谢 | 第8-13页 |
| 1 前言 | 第13-21页 |
| ·糖尿病性白内障及其发病机制 | 第13-16页 |
| ·白内障治疗现状 | 第16页 |
| ·石斛多糖研究进展 | 第16-18页 |
| ·论文研究的目标和意义 | 第18-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-34页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| ·霍山石斛多糖的提取 | 第23页 |
| ·霍山石斛多糖对糖尿病性白内障的干预作用 | 第23-33页 |
| ·复制糖尿病大鼠白内障动物模型 | 第23页 |
| ·实验分组 | 第23-24页 |
| ·大鼠体重及血糖测定 | 第24页 |
| ·晶状体形态学活体观察 | 第24页 |
| ·晶状体分离与预处理 | 第24页 |
| ·糖尿病白内障大鼠晶状体组织iNOS mRNA表达的RT-PCR分析 | 第24-26页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第24页 |
| ·晶状体RNA的抽提 | 第24-25页 |
| ·晶状体RNA的纯度检测 | 第25页 |
| ·晶状体RNA完整性检测 | 第25页 |
| ·晶状体RNA的产量计算 | 第25页 |
| ·晶状体RNA的RT-PCR | 第25-26页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第26页 |
| ·晶状体组织NO浓度测定 | 第26-27页 |
| ·晶状体组织NOS活性测定 | 第27页 |
| ·晶状体组织谷胱甘肽测定 | 第27页 |
| ·晶状体组织谷胱甘肽过氧化物酶测定 | 第27-28页 |
| ·晶状体组织谷胱甘肽-S转移酶(glutathione S-transferase,GST)测定 | 第28页 |
| ·晶状体组织谷胱甘肽还原酶测定 | 第28-29页 |
| ·晶状体组织丙二醛测定 | 第29页 |
| ·晶状体组织超氧化物歧化酶测定 | 第29-30页 |
| ·主要试剂配制 | 第29页 |
| ·测定原理 | 第29-30页 |
| ·测定方法 | 第30页 |
| ·晶状体组织过氧化氢酶测定 | 第30-31页 |
| ·主要试剂配制 | 第30页 |
| ·测定原理 | 第30页 |
| ·测定方法 | 第30-31页 |
| ·晶状体蛋白氧化损伤的检测 | 第31-32页 |
| ·晶状体糖基化终产物的测定 | 第32-33页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第32页 |
| ·晶状体组织的处理 | 第32-33页 |
| ·晶状体组织匀浆上清液中胶原蛋白含量的测定 | 第33页 |
| ·AGES的荧光测定 | 第33页 |
| ·统计分析 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-42页 |
| ·大鼠体重及血糖 | 第34页 |
| ·裂隙灯检查 | 第34-35页 |
| ·晶状体组织iNOS mRNA的表达 | 第35-38页 |
| ·晶状体组织RNA纯度及完整性检验 | 第35页 |
| ·石斛多糖对晶状体组织iNOS mRNA表达的影响 | 第35-38页 |
| ·石斛多糖对晶状体组织NO水平、NOS活性的影响 | 第38-39页 |
| ·石斛多糖对晶状体组织GSH、GSH-PX、GR、GST活性的影响 | 第39页 |
| ·石斛多糖对晶状体组织CAT、SOD、MDA活性及蛋白氧化损伤影响 | 第39-41页 |
| ·石斛多糖对晶状体组织蛋白质糖基化产物(AGEs)的影响 | 第41-42页 |
| 4.讨论 | 第42-45页 |
| ·石斛多糖对晶状体氧化应激的干预作用 | 第42-44页 |
| ·石斛多糖对晶状体蛋白质糖基化终产物AGEs形成的抑制作用 | 第44页 |
| ·糖尿病性白内障中氧化作用与糖化作用的关系 | 第44-45页 |
| 5.结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第51页 |
