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拟南芥t387突变体的基因芯片分析及其抗干旱机理的初步研究

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-9页
缩略表第9-10页
第一部分 文献综述第10-27页
 一 胁迫引起的细胞内代谢物质的变化第11-15页
  1 LEA蛋白第11-13页
  2 氨基酸代谢第13-14页
  3 ROS第14页
  4 胺第14-15页
  5 海藻糖第15页
 二 植物抗水分胁迫的信号转导途径第15-26页
  1 植物感受胁迫信号的感受器第16-17页
  2 参与水分胁迫的第二信使第17-18页
  3 胁迫诱导的转录因子第18-26页
   ·不依赖于ABA的信号途径中胁迫基因的表达第20-23页
   ·依赖于ABA的信号途径中胁迫基因的表达第23-25页
   ·DREB调节因子和其他调节因子之间存在信号交叉第25-26页
 本论文的选题依据和意义第26-27页
第二部分 实验材料和方法第27-38页
 一 实验材料第27页
  1 植物材料第27页
  2 菌种和质粒第27页
  3 引物、测序第27页
 二 实验试剂第27-30页
  1 常用的分子生物学试剂第27-28页
  2 常用培养基第28-30页
   ·LB培养基配方第28页
   ·1/2 MS培养基配方第28页
   ·含mannitol的1/2 MS培养基配方第28-29页
   ·Phytagel琼脂培养基的配方第29页
   ·B5营养液配方第29页
   ·气孔观察缓冲液第29-30页
 三 实验方法第30-38页
  1 植物的培养第30页
  2 基因芯片材料第30页
  3 干旱和mannitol胁迫处理方法第30-31页
   ·干旱处理方法第30页
   ·营养土里培养的材料用mannitol进行胁迫处理第30-31页
  4 生理指标分析第31-32页
   ·失水速率的测定第31页
   ·气孔的观察与气孔孔径大小的测定第31页
   ·便携式光合仪测定蒸腾速率、气孔导度及光合作用速率第31页
   ·叶片水势测定第31-32页
   ·培养皿上的材料用mannitol进行胁迫处理第32页
   ·phytagel琼脂无菌培养第32页
  5 DREB2A、RD29A、COR47和STZ基因的RT-PCR分析第32-38页
   ·总RNA提取(Trizol法)第32页
   ·RNA的紫外分光分析第32-33页
   ·RNA琼脂糖凝胶电泳第33页
   ·RT-PCR扩增目的片断第33-34页
   ·切胶回收PCR产物第34页
   ·连接T载体第34-35页
   ·电击感受态细菌的制备第35页
   ·电击转化及蓝白斑筛选第35页
   ·碱法提质粒第35-36页
   ·酶切检测体系第36-37页
   ·检测基因表达差异时材料的处理第37页
   ·RT-PCR扩增检测基因表达差异第37-38页
第三部分 实验结果与讨论第38-70页
 一 基因芯片数据及分析第38-55页
  1 物质代谢相关基因发生明显变化第38-43页
  2 光合作用相关酶基因下调第43-44页
  3 相关功能蛋白基因上调第44-49页
   ·膜保护系统基因纷纷上调第47页
   ·产生可溶性高亲水产物的酶系统上调第47-48页
   ·毒性清除相关基因上调第48-49页
  4 相关调节蛋白上调表达第49-55页
   ·钙调素蛋白基因上调第51页
   ·蛋白激酶增高表达第51页
   ·转录因子明显的增高表达第51-55页
 二 t387突变体的抗旱机理分析第55-62页
  1 t387突变体有较强的抵御干旱的能力第55-57页
   ·t387突变体抗旱能力强第55页
   ·t387突变体抵御甘露醇胁迫能力强第55-57页
  2 生理指标的检测分析第57-62页
   ·t387突变体失水速率较野生型快第57-58页
   ·t387突变体气孔孔径比野生型大第58-59页
   ·t387突变体气孔导度大、蒸腾速率快、光合作用速率低第59页
   ·t387突变体叶片水势 #5l第59-60页
   ·t387突变体更耐受渗透胁迫第60-61页
   ·t387突变体侧根发达第61-62页
 三 DREB2A、COR47、RD29A和STZ基因的RT-PCR分析第62-66页
  1 拟南芥总RNA检测第62-63页
  2 扩增DREB2A、COR47、RD29A和STZ基因第63-64页
  3 差异结果分析第64-66页
 讨论第66-70页
第四部分 小结和展望第70页
 一 小结第70页
 二 展望第70页
在读期间发表文章情况第70-71页
参考文献第71-79页
致谢第79-80页

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