| 摘要 | 第1-3页 |
| Summary | 第3-4页 |
| 本文缩写词及英汉对照 | 第4-8页 |
| 第一章 前言 | 第8-14页 |
| ·曲霉的分布与人类的关系 | 第8页 |
| ·曲霉属形态学分类研究概况 | 第8-10页 |
| ·RAPD 技术与ITS 序列分析在真菌分类鉴定上的应用 | 第10-12页 |
| ·研究目的与意义 | 第12-14页 |
| 第二章 曲霉菌的分离与形态鉴定 | 第14-21页 |
| ·材料与方法 | 第14页 |
| ·菌种收集 | 第14页 |
| ·单孢菌株的获得 | 第14页 |
| ·形态鉴定 | 第14页 |
| ·形态鉴定结果 | 第14-20页 |
| ·分离菌的主要鉴别特征 | 第15-20页 |
| ·小结与讨论 | 第20-21页 |
| 第三章 曲霉菌的RAPD 分析和ITS 序列分析 | 第21-41页 |
| ·材料与方法 | 第21页 |
| ·供试菌株 | 第21页 |
| ·菌丝体的培养收集 | 第21页 |
| ·基因组DNA 提取 | 第21-24页 |
| ·使用的仪器 | 第21-22页 |
| ·DNA 提取 | 第22-24页 |
| ·随机引物筛选 | 第24页 |
| ·RAPD 反应体系的优化 | 第24-25页 |
| ·模板(10ng/μl)用量的筛选 | 第24页 |
| ·TaqDNA 聚合酶（2U／μl）用量的筛选 | 第24页 |
| ·10×PCR Buffer（含20mMMgCl_2）用量的筛选 | 第24-25页 |
| ·引物（33ng/μl）用量的筛选 | 第25页 |
| ·dNTPs（10mmol/L）用量的筛选 | 第25页 |
| ·RAPD 扩增程序筛选 | 第25页 |
| ·电泳分析 | 第25-26页 |
| ·电泳谱带的记录 | 第26页 |
| ·数据统计及分析 | 第26页 |
| ·rDNA ITS 的扩增与测序 | 第26-27页 |
| ·扩增引物 | 第26页 |
| ·扩增体系 | 第26页 |
| ·扩增程序 | 第26-27页 |
| ·扩增产物的电泳检测 | 第27页 |
| ·ITS 测序 | 第27页 |
| ·数据处理 | 第27页 |
| ·结果与分析 | 第27-37页 |
| ·提取曲霉菌DNA 几种方法的比较 | 第27-28页 |
| ·引物筛选 | 第28页 |
| ·RAPD 扩增体系的组成 | 第28-30页 |
| ·RAPD 扩增程序的筛选结果 | 第30-35页 |
| ·SPSS 10.0 统计软件分析 | 第35-37页 |
| ·ITS 的碱基序列 | 第37-40页 |
| ·PCR 扩增的目的片断 | 第37-38页 |
| ·ITS 的碱基序列 | 第38页 |
| ·ITS 序列的系统发育分析 | 第38-40页 |
| ·小结与讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-44页 |
| ·试验中遇到的问题和注意事项 | 第41-42页 |
| ·提取曲霉基因组DNA | 第41页 |
| ·PCR 扩增 | 第41-42页 |
| ·电泳 | 第42页 |
| ·PCR 产物回收 | 第42页 |
| ·RAPD 分子标记 | 第42-43页 |
| ·ITS 测序 | 第43页 |
| ·试验中需要改进的地方 | 第43-44页 |
| 第五章 结论 | 第44-47页 |
| ·曲霉菌的分离和形态鉴定 | 第44页 |
| ·曲霉基因组DNA 的提取 | 第44页 |
| ·适合曲霉RAPD 的反应体系和程序 | 第44页 |
| ·随机引物筛选 | 第44页 |
| ·聚类分析 | 第44-45页 |
| ·ITS 序列分析采用的PCR 反应体系和程序 | 第45页 |
| ·ITS 测序结果 | 第45-46页 |
| ·RAPD 与ITS 序列分析在曲霉菌分类上的可行性 | 第46-47页 |
| 附表1 14 个曲霉菌菌株RAPD 谱带[存在记为（1）或不存在为（0）] | 第47-52页 |
| 附表2 6 种曲霉菌及外群（A.niger）排列后的ITS 序列 | 第52-56页 |
| 附图1 查氏培养基上曲霉菌落形态图 | 第56-58页 |
| Appendage1 The colony feature on czapek’s agar of Aspergillus | 第56-58页 |
| 附图2 曲霉显微形态图 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 作者简介 | 第68-69页 |
| 导师简介 | 第69-70页 |
