| 第一章 文献综述 | 第1-22页 |
| 1．1 燃料油品脱硫的重要性及意义 | 第10-11页 |
| 1．2 油品中硫的主要存在形式 | 第11-12页 |
| 1．3 油品脱硫工艺技术 | 第12-18页 |
| 1．3．1 加氢脱硫(HDS) | 第13-14页 |
| 1．3．2 非加氢脱硫方法 | 第14-18页 |
| 1．3．2．1 酸碱精制 | 第14页 |
| 1．3．2．2 氧化法 | 第14-15页 |
| 1．3．2．3 萃取法 | 第15页 |
| 1．3．2．4 络合法 | 第15页 |
| 1．3．2．5 吸附法 | 第15-16页 |
| 1．3．2．6 催化法 | 第16页 |
| 1．3．2．7 生物脱硫(BDS) | 第16-18页 |
| 1．4 生物脱硫(BDS)的研究现状 | 第18-20页 |
| 1．5 本文的研究前景与研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 微生物脱硫菌种的筛选及脱硫途径的研究 | 第22-33页 |
| 2．1 前言 | 第22页 |
| 2．2 实验材料与方法 | 第22-23页 |
| 2．2．1 本论文所用的主要试剂 | 第22-23页 |
| 2．2．2 本论文所用的主要仪器 | 第23页 |
| 2．2．3 各种培养基的组成 | 第23页 |
| 2．3 脱硫菌种筛选的实验方法和步骤 | 第23-26页 |
| 2．3．1 采样 | 第24页 |
| 2．3．2 菌种的分离、纯化 | 第24页 |
| 2．3．3 专一性脱硫菌种的筛选 | 第24-26页 |
| 2．3．4 高活性脱硫菌种的驯化 | 第26页 |
| 2．3．5 菌种的保藏 | 第26页 |
| 2．4 菌种脱硫途径的研究 | 第26-31页 |
| 2．4．1 Gibbs检验法 | 第26-27页 |
| 2．4．2 高效液相色谱法(HPLC) | 第27-29页 |
| 2．4．3 GC／MS联用仪分析脱硫过程中的中间产物及最终产物 | 第29-31页 |
| 2．5 结果与讨论 | 第31-32页 |
| 2．6 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 煤油生物催化脱硫的实验研究 | 第33-39页 |
| 3．1 前言 | 第33页 |
| 3．2 实验材料及方法 | 第33-34页 |
| 3．2．1 接种物及培养 | 第33页 |
| 3．2．2 分析方法 | 第33-34页 |
| 3．3 实验 | 第34页 |
| 3．3．1 采样及菌种的激活 | 第34页 |
| 3．3．2 脱硫效果的检测 | 第34页 |
| 3．4 结果与讨论 | 第34-38页 |
| 3．4．1 菌种样品的初步筛选 | 第34-35页 |
| 3．4．2 反应条件初探 | 第35-38页 |
| 3．4．2．1 温度及初始pH的选择 | 第35页 |
| 3．4．2．2 培养基的选择 | 第35-36页 |
| 3．4．2．3 氧气量对菌株生长和脱硫的影响 | 第36页 |
| 3．4．2．4 吸光度的说明 | 第36-37页 |
| 3．4．2．5 煤油中硫醇初始浓度对脱硫率的影响 | 第37-38页 |
| 3．4．3 结论 | 第38页 |
| 3．5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 微生物菌脱除柴油中含硫化合物的研究 | 第39-69页 |
| 4．1 YS-S-4菌脱除柴油中含硫化合物的研究 | 第39-45页 |
| 4．1．1 实验方法和步骤 | 第39-40页 |
| 4．1．1．1 菌种的培养、筛选 | 第39-40页 |
| 4．1．1．2 分析方法 | 第40页 |
| 4．1．2 结果与讨论 | 第40-44页 |
| 4．1．2．1 菌种的筛选 | 第40页 |
| 4．1．2．2 初始pH值对YS-S-4菌株的生长和脱硫的影响 | 第40-41页 |
| 4．1．2．3 硫源对YS-S-4生长和脱硫活性的影响 | 第41-42页 |
| 4．1．2．4 碳源对YS-S-4生长和脱硫的影响 | 第42页 |
| 4．1．2．5 氮源对YS-S-4生长和脱硫的影响 | 第42-44页 |
| 4．1．2．6 将脱硫菌应用于模拟柴油体系 | 第44页 |
| 4．1．3 结论 | 第44-45页 |
| 4．2 红串红球菌NCC-1脱除柴油中含硫化合物的研究 | 第45-62页 |
| 4．2．1 实验方法和步骤 | 第45页 |
| 4．2．2 专一性脱硫菌的筛选与鉴定 | 第45-46页 |
| 4．2．3 红串红球菌NCC-1降解DBT的途径 | 第46-48页 |
| 4．2．4 红串红球菌NCC-1的生长及其脱除水相中二苯并噻吩 | 第48-54页 |
| 4．2．4．1 温度对红串红球菌NCC-1生长的影响 | 第48-49页 |
| 4．2．4．2 初始pH值对红串红球菌NCC-1的影响 | 第49-50页 |
| 4．2．4．3 碳源的选择和碳源浓度的确定 | 第50页 |
| 4．2．4．4 氮源的选择和氮源浓度的确定 | 第50-52页 |
| 4．2．4．5 硫源对NCC-1生长和脱硫活性的影响 | 第52-54页 |
| 4．2．5 红串红球菌NCC-1对不同有机硫化物的代谢 | 第54-59页 |
| 4．2．5．1 红串红球菌NCC-1对DBT的代谢 | 第54页 |
| 4．2．5．2 红串红球菌NCC-1对4,6-DMDBT的代谢 | 第54-56页 |
| 4．2．5．3 红串红球菌NCC-1对DBTO_2的代谢 | 第56-57页 |
| 4．2．5．4 红串红球菌NCC-l对PS的代谢 | 第57-58页 |
| 4．2．5．5 红串红球菌NCC-1对BT的代谢 | 第58-59页 |
| 4．2．5．6 红串红球菌NCC-1代谢不同有机硫化物的比较 | 第59页 |
| 4．2．6 红串红球菌NCC-1在油水两相中的脱硫 | 第59-60页 |
| 4．2．7 结论 | 第60-62页 |
| 4．3 LB-H菌的培养及其对二苯并噻吩中硫元素脱除的影响 | 第62-67页 |
| 4．3．1 实验材料及方法 | 第62页 |
| 4．3．1．1 菌株及培养 | 第62页 |
| 4．3．1．2 分析方法 | 第62页 |
| 4．3．2 结果与讨论 | 第62-67页 |
| 4．3．2．1 初始pH值对菌株生长的影响 | 第62-63页 |
| 4．3．2．2 碳源的选择和碳源浓度的确定 | 第63-64页 |
| 4．3．2．3 氮源的选择和氮源浓度的确定 | 第64-65页 |
| 4．3．2．4 不同硫源对菌株生长和脱硫的影响 | 第65-66页 |
| 4．3．2．5 LB-H菌株的脱硫特性 | 第66-67页 |
| 4．3．3 结论 | 第67页 |
| 4．4 本章小结 | 第67-69页 |
| 第五章 生物脱硫过程反应器的初探和电化学催化氧化脱硫的设想 | 第69-78页 |
| 5．1 生物脱硫过程的生物反应器的初探 | 第69-72页 |
| 5．1．1 概述 | 第69-71页 |
| 5．1．2 生物反应器的构建 | 第71-72页 |
| 5．1．3 小结 | 第72页 |
| 5．2 电化学催化氧化脱硫的设想 | 第72-78页 |
| 5．2．1 概述 | 第72-74页 |
| 5．2．2 实验结果和讨论 | 第74-78页 |
| 第六章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 6．1 研究工作总结 | 第78-79页 |
| 6．2 本文创新点 | 第79页 |
| 6．3 未来工作展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
