| 中文摘要 | 第1-21页 |
| 英文摘要 | 第21-26页 |
| 第一篇 前言 | 第26-60页 |
| 第一章 生物材料的研究进展和论文研究目标，内容 | 第26-60页 |
| 1 抗凝血材料 | 第27-41页 |
| 1．1 研究和发展抗凝血生物材料的重大意义 | 第27-30页 |
| 1．1．1 广阔的应用前景 | 第27-29页 |
| 1．1．2 重要的科学意义 | 第29-30页 |
| 1．2 血液在材料表面凝固的基本过程 | 第30-32页 |
| 1．3 材料表面性质与抗凝血性关系的研究 | 第32-34页 |
| 1．4 抗凝血高分子材料的研究现状 | 第34-39页 |
| 1．4．1 组织工程(Tissue Engineering) | 第34-35页 |
| 1．4．2 高分子材料的表面改性(Surface modification) | 第35-39页 |
| 1．4．2．1 表面接枝改性(Grafting) | 第36-38页 |
| 1．4．2．2 表面涂层(Coating) | 第38-39页 |
| 1．4．2．3 高分子材料与抗凝血添加剂(Additives)物理共混 | 第39页 |
| 1．5 血液相容性评价的方法 | 第39-41页 |
| 2 可降解吸收生物材料 | 第41-45页 |
| ·脂肪 | 第41-43页 |
| 2．1．1 脂肪族聚酯 | 第41-42页 |
| 2．1．2 聚α-氨基酸 | 第42-43页 |
| 2．2 应用 | 第43-45页 |
| 2．2．1 外科材料 | 第43-45页 |
| 3 药用高分子材料 | 第45-55页 |
| 3．1 药用高分子材料与药物制剂的发展 | 第45-47页 |
| 3．2 我国药用高分子应用和研究开发现状 | 第47-49页 |
| 3．3 药用高分子材料的安全性 | 第49-50页 |
| 3．4 高分子辅料与缓控释系统发展的关系 | 第50-55页 |
| 3．4．1 高分子辅料促进了缓控释系统的飞速发展 | 第50-51页 |
| 3．4．2 高分子辅料促进了缓控释制剂技术的发展 | 第51-52页 |
| 3．4．3 高分子辅料促进了缓控释剂型的发展 | 第52-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 第二篇 抗凝血材料 | 第60-242页 |
| 第一章 磷-铵两性离子在聚合物表面的构建及其抗凝血作用研究 | 第60-103页 |
| 1 磷-铵两性离子的合成和表征 | 第60-81页 |
| 1．1 磷-铵两性离子的合成 | 第60-68页 |
| 1．1．1 试剂与仪器 | 第60-61页 |
| 1．1．2 合成方法 | 第61-68页 |
| 1．1．2．1 2-氯-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(CDP)的合成 | 第63页 |
| 1．1．2．2 2-氯-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(COP)的合成 | 第63页 |
| 1．1．2．3 2-(6-羟基)己氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(HOP)的合成 | 第63页 |
| 1．1．2．4 (6-羟基)己基-2-(三甲基氨)乙基磷酸盐(HTEP)的合成 | 第63-64页 |
| 1．1．2．5 含羟基的磷杂环戊烷的合成 | 第64-66页 |
| 1．1．2．5．1 2-(4-羟基)丁氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(1a)的合成 | 第64页 |
| 1．1．2．5．2 2-(5-羟基)戊氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(1b)的合成 | 第64页 |
| 1．1．2．5．3 2-(6-羟基)己氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(1c)的合成 | 第64-65页 |
| 1．1．2．5．4 2-(8-羟基)辛氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(1d)的合成 | 第65页 |
| 1．1．2．5．5 2-(10-羟基)癸氧基-2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环戊烷(1e)的合成 | 第65-66页 |
| 1．1．2．6 含羟基的磷酰胆碱的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．6．1 4-羟基-2-丁基磷酰胆碱(2a)的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．6．2 5-羟基-2-戊基磷酰胆碱(2b)的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．6．3 6-羟基-2-己基磷酰胆碱(2c)的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．6．4 8-羟基-2-辛基磷酰胆碱(2d)的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．6．5 10-羟基-2-癸基磷酰胆碱(2e)的合成 | 第66页 |
| 1．1．2．7 含硅功能团的磷酰胆碱—6-[3-(三乙氧基硅烷基)丙基]氨基甲酰氧基-2-己基磷酰胆碱(A)的合成 | 第66-67页 |
| 1．1．2．8 2-(2-氧代-1，3，2-二氧磷杂环)乙基甲基丙烯酸(OPEMA) | 第67页 |
| 1．1．2．9 2-甲基丙烯酰氧基乙基磷酰胆碱(MPC) | 第67页 |
| 1．1．2．10 4-羟基-2-丁基磷酰胆碱(BTEP) | 第67-68页 |
| 1．1．3 溶解性试验 | 第68页 |
| 1．1．4 傅立叶变换红外光谱(FT-IR)分析 | 第68页 |
| 1．1．5 核磁共振谱(NMR)分析 | 第68页 |
| 1．1．6 元素分析 | 第68页 |
| 1．2 结果与讨论 | 第68-78页 |
| 1．2．1 HOP和HTEP的合成与表征 | 第68-71页 |
| ·HOP和HTEP在各种溶剂中的溶解性能 | 第68页 |
| 1．2．1．2 HOP和HTEP的FT-IR谱分析 | 第68-69页 |
| 1．2．1．3 HOP和HTEP的1H-NMR谱分析 | 第69-70页 |
| 1．2．1．4．HOP和HTEP的元素分析 | 第70-71页 |
| 1．2．2 含羟基磷杂环戊烷1a-e的合成与表征 | 第71-73页 |
| 1．2．3 含羟基磷酰胆碱2a-e的合成与表征 | 第73-75页 |
| 1．2．4 A的表征 | 第75-78页 |
| 1．3 总结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-81页 |
| 2 磷-铵两性离子结构在聚合物表面的构建 | 第81-96页 |
| 2．1 含磷酰胆碱结构的嵌段聚醚氨酯的合成 | 第81-89页 |
| 2．1．1 试剂与仪器 | 第81页 |
| 2．1．2 方法 | 第81-85页 |
| 2．1．2．1 合成 | 第82-83页 |
| 2．1．2．1．1 HDI-HTEP单体的合成 | 第82-83页 |
| 2．1．2．1．2 含磷酰胆碱结构的嵌段聚醚氨酯(SPUHTEP)的合成 | 第83页 |
| 2．1．2．1．3 不含磷酰胆碱结构的嵌段聚醚氨酯(SPU control)的合成 | 第83页 |
| 2．1．2．2 滴定法测定HDI-HTEP单体的合成 | 第83-84页 |
| 2．1．2．3 力学性能的测定 | 第84页 |
| 2．1．2．4 衰减全反射红外光谱(ATR-FTIR)的测定 | 第84页 |
| 2．1．2．5 X-射线光电子能谱(ESCA)的测定 | 第84页 |
| 2．1．2．6 表面张力的测定 | 第84-85页 |
| 2．1．3 结果和讨论 | 第85-88页 |
| 2．1．3．1 滴定法测定HDI-HTEP单体 | 第85页 |
| 2．1．3．2 SPUHTEP和SPUcontrol膜的力学性能测试 | 第85-86页 |
| 2．1．3．3 SPUHTEP和SPUcontrol表面的衰减全反射红外光谱分析 | 第86-87页 |
| 2．1．3．4 SPUHTEP和SPUcontrol的X射线光电子能谱分析 | 第87-88页 |
| 2．1．3．5 SPUHTEP和SPUcontrol表面的水接触角分析 | 第88页 |
| 2．1．4 小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89页 |
| 2．2 臭氧活化法在硅橡胶表面构建磷酰胆碱结构 | 第89-95页 |
| 2．2．1 试剂与仪器 | 第89-90页 |
| 2．2．2 方法 | 第90-91页 |
| 2．2．2．1 臭氧活化 | 第90页 |
| 2．2．2．2 表面过氧化物浓度 | 第90-91页 |
| 2．2．2．3 ESCA(XPS) | 第91页 |
| 2．2．2．4 ATR-FTIR | 第91页 |
| 2．2．2．5 接触角 | 第91页 |
| 2．2．2．6 吸水率 | 第91页 |
| 2．2．3 结果和讨论 | 第91-95页 |
| 2．2．3．1 臭氧活化时间对硅橡胶表面过氧基团浓度的影响 | 第91-92页 |
| 2．2．3．2 表面构建磷酰胆碱结构 | 第92-94页 |
| 2．2．3．3 亲水性实验 | 第94-95页 |
| 2．2．4 小结 | 第95页 |
| 参考文献 | 第95-96页 |
| 3 抗凝血性能研究 | 第96-103页 |
| 3．1 含磷酰胆碱结构的嵌段聚醚氨酯 | 第96-99页 |
| 3．1．1 试剂与仪器 | 第96页 |
| 3．1．2 实验 | 第96-99页 |
| 3．1．2．1 溶血实验 | 第96-97页 |
| 3．1．2．2 血小板吸附实验 | 第97页 |
| 3．1．2．3 结果与讨论 | 第97-98页 |
| 3．1．2．3．1 溶血实验 | 第97页 |
| 3．1．2．3．2 血小板吸附实验 | 第97-98页 |
| 3．1．2．3．3 抗凝血性能提高的解释 | 第98页 |
| 3．1．2．4 小结 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99页 |
| 3．2 硅橡胶和聚氨酯表面接枝MPC | 第99-102页 |
| 3．2．1 试剂与仪器 | 第99页 |
| 3．2．2 实验 | 第99-102页 |
| 3．2．2．1 血小板粘附实验 | 第99-100页 |
| 3．2．2．2 结果与讨论 | 第100-102页 |
| 3．2．2．2．1 血小板粘附 | 第100-102页 |
| 3．2．3 小结 | 第102页 |
| 参考文献 | 第102-103页 |
| 第二章 磺-铵两性离子在聚合物表面的构建及其抗凝血作用研究 | 第103-217页 |
| 3．3 在聚氨酯表面用臭氧活化法接枝DMMSA及其抗凝血性能研究 | 第103-119页 |
| 3．3．1 试剂与仪器 | 第103页 |
| 3．3．2 实验方法 | 第103-105页 |
| 3．3．2．1 成膜 | 第103页 |
| 3．3．2．2 表面接枝 | 第103-104页 |
| 3．3．2．3 膜的表征 | 第104页 |
| 3．3．2．3．1 XPS | 第104页 |
| 3．3．2．3．2 ATR-FTIR | 第104页 |
| 3．3．2．3．3 GPC | 第104页 |
| 3．3．2．3．4 接枝条件的影响 | 第104页 |
| 3．3．2．3．5 吸水率 | 第104页 |
| 3．3．2．3．6 接触角 | 第104页 |
| 3．3．2．4 抗血小板粘附性 | 第104-105页 |
| 3．3．2．5 全血实验 | 第105页 |
| 3．3．2．6 蛋白质吸附实验 | 第105页 |
| 3．3．3 结果与讨论 | 第105-118页 |
| 3．3．3．1 XPS | 第105-107页 |
| 3．3．3．2 ATR-FTIR | 第107-108页 |
| 3．3．3．3 GPC | 第108-109页 |
| 3．3．3．4 接枝条件对接枝率的影响 | 第109页 |
| 3．3．3．4．1 单体浓度对接枝率的影响 | 第109页 |
| 3．3．3．4．2 接枝聚合时间对接枝率的影响 | 第109页 |
| 3．3．3．4．3 接枝温度影响 | 第109页 |
| 3．3．3．5 接枝膜性质 | 第109-110页 |
| 3．3．3．5．1 吸水率 | 第109页 |
| 3．3．3．5．2 接触角 | 第109-110页 |
| 3．3．3．6 抗血小板粘附性 | 第110-116页 |
| 3．3．3．7 全血粘附实验 | 第116-118页 |
| 3．3．3．8 蛋白质吸附性 | 第118页 |
| 3．3．4 小结 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119页 |
| 3．4 含磺铵两性离子的嵌段聚醚氨酯的合成 | 第119-127页 |
| 3．4．1 试剂与仪器 | 第119-120页 |
| 3．4．2 实验方法 | 第120-122页 |
| 3．4．2．1 MDI-DMEA单体的合成 | 第120-121页 |
| 3．4．2．2 含磺铵两性离子结构的嵌段聚醚氨酯的合成 | 第121页 |
| 3．4．2．3 不含磺铵两性离子结构的嵌段聚醚氨酯(SPU control)的合成 | 第121-122页 |
| 3．4．2．4 测试及表征 | 第122页 |
| 3．4．3 结果和讨论 | 第122-126页 |
| 3．4．3．1 滴定法测定MDI-DMEA单体合成的讨论 | 第122-123页 |
| 3．4．3．2 SPUcontrol和SPUMDI-DMEA-PS表面的衰减全反射红外光谱分析 | 第123页 |
| 3．4．3．3 SPUMDI-DMEA-PS和SPUcontrol表面的X射线光电子能谱分析 | 第123-125页 |
| 3．4．3．4 SPUMDI-DMEA-PS和SPUcontrol表面的水接触角分析 | 第125页 |
| 3．4．3．5 血小板粘附试验 | 第125-126页 |
| 3．4．4 小结 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127页 |
| 3．5 丙烯酸酯型的磺-铵两性离子单体(DMMSA)在聚醚氨酯膜表面的接枝共聚和血液相容性的研究 | 第127-140页 |
| 3．5．1 试剂与仪器 | 第127页 |
| 3．5．2 实验方法 | 第127-131页 |
| 3．5．2．1 SPEU的合成[1，2]及其膜的制备 | 第127-129页 |
| 3．5．2．1．1 SPEU预聚体的合成 | 第128页 |
| 3．5．2．1．2 SPEU预聚体扩链 | 第128页 |
| 3．5．2．1．3 SPEU膜的制备 | 第128-129页 |
| 3．5．2．2 SPEU膜的表面改性 | 第129页 |
| 3．5．2．3 表征 | 第129-130页 |
| 3．5．2．4 血液相容性评价 | 第130-131页 |
| 3．5．2．4．1 血小板粘附实验 | 第130页 |
| 3．5．2．4．2 全血接触实验 | 第130-131页 |
| 3．5．3 结果与讨论 | 第131-140页 |
| 3．5．3．1 SPEU本体性能的表征 | 第131-133页 |
| 3．5．3．2 SPEU膜表面性质的表征 | 第133-136页 |
| 3．5．3．3 SPEU-g-PDMMSA的血液相容性 | 第136-140页 |
| 3．5．3．3．1 体外血小板粘附 | 第136-138页 |
| 3．5．3．3．2 体外全血接触实验 | 第138-140页 |
| 3．5．4 小结 | 第140页 |
| 参考文献 | 第140页 |
| 3．6 DMMSA在聚丁二烯型聚氨酯表面接枝共聚及抗凝血性能研究 | 第140-154页 |
| 3．6．1 试剂与仪器 | 第140-141页 |
| 3．6．2 实验方法 | 第141-143页 |
| 3．6．2．1 V-SPU的合成[1，2]及其膜的制备 | 第141-142页 |
| 3．6．2．1．1 V-SPU预聚体的合成 | 第141-142页 |
| 3．6．2．1．2 V-SPU预聚体扩链 | 第142页 |
| 3．6．2．1．3 V-SPU膜的制备 | 第142页 |
| 3．6．2．2 V-SPU膜的表面改性 | 第142-143页 |
| 3．6．2．3 表征 | 第143页 |
| 3．6．3 结果与讨论 | 第143-154页 |
| 3．6．3．1 V-SPU膜表面性质表征 | 第143-149页 |
| 3．6．3．1．1 ATR-FTIR研究 | 第143-144页 |
| 3．6．3．1．2 ESCA分析 | 第144-147页 |
| 3．6．3．1．3 单体浓度对接枝率的影响 | 第147-149页 |
| 3．6．3．1．4 水接触角的测定 | 第149页 |
| 3．6．3．2 血小板在V-SPU膜表面的粘附 | 第149-154页 |
| 3．6．4 小结 | 第154页 |
| 参考文献 | 第154页 |
| 3．7 纤维素膜表面化学改性及抗凝血性质研究 | 第154-165页 |
| 3．7．1 试剂与仪器 | 第155页 |
| 3．7．2 实验部分 | 第155-157页 |
| 3．7．2．1 纤维素膜的表面改性 | 第155-156页 |
| 3．7．2．2 纤维素膜表面性质表征 | 第156页 |
| 3．7．2．3 体外血小板粘附 | 第156-157页 |
| 3．7．3 结果与讨论 | 第157-164页 |
| 3．7．3．1 纤维素膜表面性质表征 | 第157-161页 |
| 3．7．3．1．1 ATR-FTIR研究 | 第157-158页 |
| 3．7．3．1．2 ESCA分析 | 第158-161页 |
| 3．7．3．2 血小板在纤维素膜表面的粘附 | 第161-164页 |
| 3．7．4 小结 | 第164页 |
| 参考文献 | 第164-165页 |
| 3．8 磺铵两性离子在纤维素膜表面的构建及其抗凝血性能研究 | 第165-172页 |
| 3．8．1 试剂与仪器 | 第165-166页 |
| 3．8．2 实验方法 | 第166页 |
| 3．8．2．1 纤维素膜的预处理 | 第166页 |
| 3．8．2．2 一端含NCO基团的磺铵两性离子的合成 | 第166页 |
| 3．8．2．3 纤维素膜表面接枝磺铵两性离子 | 第166页 |
| 3．8．2．4 纤维素接枝膜的表征 | 第166页 |
| 3．8．3 结果与讨论 | 第166-171页 |
| 3．8．3．1 ATR-FTIR | 第166-167页 |
| 3．8．3．2 XPS | 第167-169页 |
| 3．8．3．3 血小板粘附试验 | 第169-170页 |
| 3．8．3．4 蛋白质吸附实验 | 第170-171页 |
| 3．8．4 小结 | 第171页 |
| 参考文献 | 第171-172页 |
| 3．9 磺铵两性离子在甲壳素膜表面的构建及其抗凝血性能研究 | 第172-184页 |
| 3．9．1 试剂与仪器 | 第172-173页 |
| 3．9．2 实验方法 | 第173-176页 |
| 3．9．2．1 甲壳素膜的制备 | 第173页 |
| 3．9．2．2 一端含NCO基团的磺铵两性离子的合成 | 第173页 |
| 3．9．2．3 异氰酸根(-NCO)含量的测定 | 第173-174页 |
| 3．9．2．4 甲壳素膜表面接枝磺铵两性离子 | 第174页 |
| 3．9．2．5 ATR-FTIR | 第174-175页 |
| 3．9．2．6 XPS | 第175页 |
| 3．9．2．7 接触角 | 第175页 |
| 3．9．2．8 血小板粘附实验 | 第175页 |
| 3．9．2．9 蛋白质吸附实验 | 第175-176页 |
| 3．9．3 结果与讨论 | 第176-184页 |
| 3．9．3．1 甲壳素溶液浓度的选择 | 第176页 |
| 3．9．3．2 温度对磺铵两性离子与HDI反应的影响 | 第176-179页 |
| 3．9．3．3 ATR—FTIR | 第179-180页 |
| 3．9．3．4 XPS | 第180-182页 |
| 3．9．3．5 接触角 | 第182页 |
| 3．9．3．6 血小板粘附实验 | 第182-183页 |
| 3．9．3．7 蛋白质吸附实验 | 第183-184页 |
| 3．9．4 小结 | 第184页 |
| 参考文献 | 第184页 |
| 3．10 侧链带有磺铵两性离子的壳聚糖抗凝血涂层的合成与表征 | 第184-195页 |
| 3．10．1 试剂与仪器 | 第185页 |
| 3．10．2 实验方法 | 第185-186页 |
| 3．10．2．1 接枝聚合 | 第185-186页 |
| 3．10．2．2 表征 | 第186页 |
| 3．10．3 结果与讨论 | 第186-194页 |
| 3．10．3．1 接枝参数 | 第186页 |
| 3．10．3．2 接枝反应发生的证据 | 第186-188页 |
| 3．10．3．2．1 通过质量测定估计 | 第186-187页 |
| 3．10．3．2．2 红外光谱分析 | 第187-188页 |
| 3．10．3．3 反应温度的影响 | 第188-189页 |
| 3．10．3．4 反应时间的影响 | 第189页 |
| 3．10．3．5 引发剂浓度的影响 | 第189-190页 |
| 3．10．3．6 单体浓度的影响 | 第190页 |
| 3．10．3．7 WAXD分析 | 第190-191页 |
| 3．10．3．8 TGA分析 | 第191-192页 |
| 3．10．3．9 血小板粘附试验 | 第192-194页 |
| 3．10．4 小结 | 第194-195页 |
| 参考文献 | 第195页 |
| 3．11 磺铵两性离子在丝素蛋白膜表面的构建及其抗凝血性能的研究 | 第195-204页 |
| 3．11．1 试剂与仪器 | 第196-197页 |
| 3．11．2 实验方法 | 第197-198页 |
| 3．11．2．1 丝素膜的处理 | 第197页 |
| 3．11．2．2 一端含NCO基团的磺铵两性离子的合成 | 第197页 |
| 3．11．2．3 一端含NCO基团的磺铵两性离子的合成 | 第197页 |
| 3．11．2．4 丝素蛋白膜表面接枝磺铵两性离子 | 第197页 |
| 3．11．2．5 丝素蛋白接枝膜的表征 | 第197-198页 |
| 3．11．3 结果与讨论 | 第198-203页 |
| 3．11．3．1 ATR-FTIR | 第198-199页 |
| 3．11．3．2 XPS | 第199-200页 |
| 3．11．3．3 接触角 | 第200-201页 |
| 3．11．3．4 血小板粘附试验 | 第201-202页 |
| 3．11．3．5 蛋白质吸附实验 | 第202-203页 |
| 3．11．4 小结 | 第203页 |
| 参考文献 | 第203-204页 |
| 3．12 磺胺两性离子在聚乙烯表面的接枝共聚和抗凝血性能研究 | 第204-217页 |
| 3．12．1 试剂与仪器 | 第204-205页 |
| 3．12．2 实验方法 | 第205-207页 |
| 3．12．2．1 膜的臭氧活化和接枝聚合 | 第205-206页 |
| 3．12．2．2 表面过氧化物浓度 | 第206页 |
| 3．12．2．3 ATR-FTIR | 第206页 |
| 3．12．2．4 XPS | 第206页 |
| 3．12．2．5 接触角 | 第206-207页 |
| 3．12．2．6 血小板粘附实验 | 第207页 |
| 3．12．3 结果与讨论 | 第207-215页 |
| 3．12．3．1 臭氧活化时间对PE膜表面过氧基团浓度的影响 | 第207-208页 |
| 3．12．3．2 臭氧活化接枝DMMSA到PE表面的机理 | 第208-209页 |
| 3．12．3．3 ATR-FTIR | 第209-210页 |
| 3．12．3．4 XPS | 第210-212页 |
| 3．12．3．5 接触角 | 第212页 |
| 3．12．3．6 血小板粘附性 | 第212-215页 |
| 3．12．4 小结 | 第215页 |
| 参考文献 | 第215-217页 |
| 第三章 羧铵两性离子在聚氯乙烯表面的接枝共聚和抗凝血性能研究 | 第217-228页 |
| 4．1 实验方法 | 第217-219页 |
| 4．1．1 试剂与仪器 | 第217-218页 |
| 4．1．2 DMMCA的合成 | 第218页 |
| 4．1．3 PVC的臭氧活化及其表面过氧化物浓度的测定 | 第218页 |
| 4．1．4 PVC膜的臭氧活化和接枝聚合 | 第218-219页 |
| 4．1．5 PVC接枝膜的表征 | 第219页 |
| 4．1．6 蛋白质吸附试验 | 第219页 |
| 4．2 结果与讨论 | 第219-226页 |
| 4．2．1 DMMCA的合成 | 第219页 |
| 4．2．2 臭氧活化时间对PVC膜表面过氧基团浓度的影响 | 第219-220页 |
| 4．2．3 PVC膜表面的接枝共聚反应 | 第220-221页 |
| 4．2．4 ATR—FTIR | 第221页 |
| 4．2．5 XPS | 第221-223页 |
| 4．2．6 膜表面的亲水性 | 第223页 |
| 4．2．7 血小板粘附试验 | 第223-226页 |
| 4．2．8 蛋白质吸附试验 | 第226页 |
| 4．3 小结 | 第226页 |
| 参考文献 | 第226-228页 |
| 第四章 动物试验 | 第228-240页 |
| 5．1 试剂与仪器 | 第228-229页 |
| 5．2 实验 | 第229-232页 |
| 5．2．1 磺—铵两性离子单体DMMSA通过臭氧活化的方法接枝共聚到PP医用导管的内外表面 | 第229-231页 |
| 5．2．2 磺—铵两性离子单体DMMSA通过臭氧活化的方法接枝共聚到PE医用导管的内外表面 | 第231-232页 |
| 5．3结果和讨论 | 第232-239页 |
| 5．3．1 磺—铵两性离子单体DMMSA通过臭氧活化的方法接枝共聚到PP医用导管的内外表面 | 第232-236页 |
| 5．3．2 磺—铵两性离子单体DMMSA通过臭氧活化的方法接枝共聚到PE医用导管的内外表面 | 第236-239页 |
| 5．4 小结 | 第239页 |
| 参考文献 | 第239-240页 |
| 第五章 结论与展望 | 第240-242页 |
| 第三篇 可生物吸收的骨修复材料的研究 | 第242-299页 |
| 第一章 聚α-羟基酸 | 第242-299页 |
| 1．1 聚α-羟基酸的制备 | 第244-255页 |
| 1．1．1 试剂与仪器 | 第244-245页 |
| 1．1．2 实验方法 | 第245-247页 |
| 1．1．2．1 丙交酯和乙交酯的合成 | 第245页 |
| 1．1．2．2 聚乳酸(PLA)、聚羟基乙酸(PGA)以及共聚物的制备 | 第245-246页 |
| 1．1．2．3 交联型PLA微粒的制备 | 第246页 |
| 1．1．2．4 表征 | 第246-247页 |
| 1．1．3 结果和讨论 | 第247-253页 |
| 1．1．3．1 乙交酯和丙交酯的1H-NMR和FT-IR谱分析 | 第247-249页 |
| 1．1．3．2 PGA、PLA以及GA与LA共聚物的FT-IR谱分析 | 第249页 |
| 1．1．3．3 PGA合成中的转化率与时间和温度的关系 | 第249-253页 |
| 1．1．4 小结 | 第253-254页 |
| 参考文献 | 第254-255页 |
| 1．2 聚α-羟基酸的结晶性能研究 | 第255-266页 |
| 1．2．1 试剂与仪器 | 第258页 |
| 1．2．2 实验方法 | 第258页 |
| 1．2．3 结果和讨论 | 第258-264页 |
| 1．2．3．1 聚合物的X-ray衍射分析 | 第258-261页 |
| 1．2．3．2 聚合物的FT-IR光谱分析 | 第261-263页 |
| 1．2．3．3 聚合物的差热分析 | 第263页 |
| 1．2．3．4 聚合物的力学性能测试 | 第263-264页 |
| 1．2．4 小结 | 第264页 |
| 参考文献 | 第264-266页 |
| 1．3 聚α-羟基酸的降解性能研究 | 第266-284页 |
| 1．3．1 试剂与仪器 | 第270-271页 |
| 1．3．2 实验方法 | 第271-273页 |
| 1．3．2．1 标准工作曲线的绘制 | 第271-272页 |
| 1．3．2．1．1 羟基乙酸在浓硫酸中的变色反应标准曲线 | 第271页 |
| 1．3．2．1．2 羟基乙酸和FeCl3的显色配合反应标准曲线的绘制 | 第271-272页 |
| 1．3．2．1．3 乳酸和FeCl3的显色配合反应标准曲线的绘制 | 第272页 |
| 1．3．2．2 聚α-羟基酸的降解测试 | 第272-273页 |
| 1．3．2．2．1 颗粒状聚α-羟基酸材料的降解 | 第272页 |
| 1．3．2．2．2 聚α-羟基酸膜的降解 | 第272-273页 |
| 1．3．2．3 聚α-羟基酸降解过程中的结晶度的测试 | 第273页 |
| 1．3．3 结果和讨论 | 第273-283页 |
| 1．3．3．1 工作曲线的绘制 | 第273-276页 |
| 1．3．3．2 聚α-羟基酸的降解讨论 | 第276-283页 |
| 1．3．3．2．1 共聚物颗粒的降解 | 第276-280页 |
| 1．3．3．2．2 PLA膜的降解讨论 | 第280-281页 |
| 1．3．3．2．3 共聚物膜的降解讨论 | 第281-282页 |
| 1．3．3．2．4 交联型PLA微粒的降解讨论 | 第282-283页 |
| 1．3．4 小结 | 第283-284页 |
| 参考文献 | 第284页 |
| 1．4 聚乳酸在口腔颌面外科中的应用研究 | 第284-299页 |
| 1．4．1 试剂与仪器 | 第286页 |
| 1．4．2 实验方法 | 第286-289页 |
| 1．4．2．1 PDLLA接骨板和螺钉的制备 | 第287页 |
| 1．4．2．2 PDLLA／rhBMP-2复合植骨材料制备 | 第287-288页 |
| 1．4．2．3 双侧下颌骨体部骨折动物模型的建立与内固定 | 第288页 |
| 1．4．2．4 PDLLA接骨板犬骨部肌肉内植入动物模型的建立 | 第288页 |
| 1．4．2．5 动物体内生物相容性研究 | 第288-289页 |
| 1．4．2．5．1 观察时间和标本处理及实验观察指标 | 第288-289页 |
| 1．4．2．5．2 整复下颌骨骨折内固定和诱导异位成骨的研究 | 第289页 |
| 1．4．2．5．3 PDLLA接骨板犬骨部肌肉内植入的实验观察 | 第289页 |
| 1．4．2．6 动物体内降解研究 | 第289页 |
| 1．4．3 结果和讨论 | 第289-297页 |
| 1．4．3．1 动物体内生物相容性研究 | 第289-293页 |
| 1．4．3．2 动物体内降解研究 | 第293-297页 |
| 1．4．4 小结 | 第297页 |
| 参考文献 | 第297-299页 |
| 第四篇 药用高分子材料 | 第299-389页 |
| 第一章 设计思想 | 第299-301页 |
| 参考文献 | 第300-301页 |
| 第二章 壳聚糖衍生物的制备 | 第301-351页 |
| 2．1 N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第301-307页 |
| 2．1．1．试剂及仪器 | 第301页 |
| 2．1．2 N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第301-302页 |
| 2．1．3 结果与讨论 | 第302-306页 |
| 2．1．3．1 合成 | 第302页 |
| 2．1．3．2 表征 | 第302-305页 |
| 2．1．3．3 物理性质研究 | 第305-306页 |
| 2．1．4 小结 | 第306-307页 |
| 2．2 O-琥珀酰-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第307-317页 |
| 2．2．1 试剂与仪器 | 第307-308页 |
| 2．2．2．1 O-琥珀酰化壳聚糖的制备 | 第307页 |
| 2．2．2．1．1 N-邻苯二甲酰壳聚糖的制备 | 第307页 |
| 2．2．2．1．2 N-邻苯二甲酰-O-琥珀酰化壳聚糖的制备 | 第307页 |
| 2．2．2．2 O-琥珀酰基-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第307-308页 |
| 2．2．2．3 O-琥珀酰基-N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第308页 |
| 2．2．3 结果与讨论 | 第308-316页 |
| 2．2．3．1 合成 | 第308-309页 |
| 2．2．3．2 表征 | 第309-314页 |
| 2．2．3．3 物理性质的研究 | 第314-316页 |
| 2．2．4 小结 | 第316-317页 |
| 2．3 O-羧甲基-N-乳糖酰化壳聚糖衍生物的制备 | 第317-323页 |
| 2．3．1 试剂及仪器 | 第317页 |
| 2．3．2 制备方法 | 第317-318页 |
| 2．3．2．1 O-羧甲基壳聚糖的制备 | 第317页 |
| 2．3．2．2．O-羧甲基-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第317-318页 |
| 2．3．2．3 O-羧甲基-N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第318页 |
| 2．3．3．结果与讨论 | 第318-323页 |
| 2．3．3．1 合成 | 第318页 |
| 2．3．3．2 表征 | 第318-321页 |
| 2．3．3．3 物理性质分析 | 第321-323页 |
| 2．3．3．4 小结 | 第323页 |
| 2．4 O-羟乙基-N-半乳糖化壳聚糖衍生物的制备 | 第323-329页 |
| 2．4．1 试剂与仪器 | 第323页 |
| 2．4．2 实验方法 | 第323-324页 |
| 2．4．2．1 O-羟乙基壳聚糖(HECS)的制备 | 第323页 |
| 2．4．2．2 O-羟乙基-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第323页 |
| 2．4．2．3 O-羟乙基-N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第323-324页 |
| 2．4．3 结果与讨论 | 第324-329页 |
| 2．4．3．1 合成 | 第324页 |
| 2．4．3．2 结构表征 | 第324-328页 |
| 2．4．3．3 物理性质 | 第328-329页 |
| 2．4．4 小结 | 第329页 |
| 2．5 O-羟丙基-N-半乳糖化壳聚糖衍生物的制备 | 第329-336页 |
| 2．5．1 试剂与仪器 | 第329-330页 |
| 2．5．2 实验方法 | 第330页 |
| 2．5．2．1 O-羟丙基壳聚糖的制备 | 第330页 |
| 2．5．2．2 O-羟丙基-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第330页 |
| 2．5．2．3 O-羟丙基-N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第330页 |
| 2．5．3 结果与讨论 | 第330-335页 |
| 2．5．3．1 合成 | 第330-331页 |
| 2．5．3．2 表征 | 第331-334页 |
| 2．5．3．3 物理性质 | 第334-335页 |
| 2．5．4 小结 | 第335-336页 |
| 2．6 N-亚甲基磷酸-N-半乳糖化壳聚糖衍生物的制备 | 第336-343页 |
| 2．6．1 试剂与仪器 | 第336页 |
| 2．6．2 实验方法 | 第336-337页 |
| 2．6．2．1 N-亚甲基磷酸壳聚糖(MPCS)的制备 | 第336页 |
| 2．6．2．2 N-亚甲基磷酸-N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第336页 |
| 2．6．2．3 N-亚甲基磷酸，N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第336-337页 |
| 2．6．3 结果与讨论 | 第337-342页 |
| 2．6．3．1 合成 | 第337-338页 |
| 2．6．3．2 结构表征 | 第338-341页 |
| 2．6．3．3 物理性质研究 | 第341-342页 |
| 2．6．4 小结 | 第342-343页 |
| 2．7 N-三甲基氯化物-N-半乳糖化壳聚糖衍生物的制备 | 第343-349页 |
| 2．7．1 试剂与仪器 | 第343页 |
| 2．7．2 实验方法 | 第343-344页 |
| 2．7．2．1 N-三甲基壳聚糖氯化物的制备 | 第343页 |
| 2．7．2．2 N-三甲基氯化物，N-乳糖酰化壳聚糖的制备 | 第343页 |
| 2．7．2．3 N-三甲基氯化物，N-乳糖胺化壳聚糖的制备 | 第343-344页 |
| 2．7．3 结果与讨论 | 第344-349页 |
| 2．7．3．1 合成 | 第344-345页 |
| 2．7．3．2 结构表征 | 第345-348页 |
| 2．7．3．3 物理性质 | 第348-349页 |
| 2．7．4 小结 | 第349页 |
| 参考文献 | 第349-351页 |
| 第三章 壳聚糖衍生物包复的5-Fu白蛋白微球的制备、表征及性质研究 | 第351-378页 |
| 3．1 微球制备方法研究 | 第351-352页 |
| 3．2 载药微球的制备 | 第352-359页 |
| 3．2．1 5-氟尿嘧啶白蛋白(5-Fu BSA)微球的制备 | 第352-357页 |
| 3．2．1．1 试剂与仪器 | 第352页 |
| 3．2．1．2 方法 | 第352-353页 |
| 3．2．1．2．1 均匀设计优化制备工艺 | 第352-353页 |
| 3．2．1．2．2 单因素分析确定最佳制备工艺 | 第353页 |
| 3．2．1．3 结果与讨论 | 第353-357页 |
| 3．2．1．3．1 微球的制备 | 第353-354页 |
| 3．2．1．3．2 均匀设计数据处理 | 第354-355页 |
| 3．2．1．3．3 影响5—Fu BSA微球体外释放的单因素考察结果 | 第355-357页 |
| 3．2．1．3．3．1 药物浓度对微球体外释放的影响 | 第355页 |
| 3．2．1．3．3．2 戊二醛加入量对微球体外释放的影响 | 第355-356页 |
| 3．2．1．3．3．3 固化时间对微球体外释放的影响 | 第356-357页 |
| 3．2．1．4 小结 | 第357页 |
| 3．2．2 壳聚糖衍生物包复5-FU白蛋白微球的的制备 | 第357-359页 |
| 3．2．2．1 试剂与仪器 | 第357页 |
| 3．2．2．2 方法 | 第357-358页 |
| 3．2．2．2．1 正交实验设计优化处方工艺 | 第357-358页 |
| 3．2．2．2．1．1 因素水平确定 | 第357-358页 |
| 3．2．2．2．1．2 优化指标选取 | 第358页 |
| 3．2．2．3 结果与讨论 | 第358-359页 |
| 3．2．2．4 小结 | 第359页 |
| 3．3 微球的表征 | 第359-365页 |
| 3．3．1 试剂 | 第359页 |
| 3．3．2 方法 | 第359-360页 |
| 3．3．2．1 ATR-FTIR | 第359页 |
| 3．3．2．2 ESCA | 第359页 |
| 3．3．2．3 粉末X衍射 | 第359-360页 |
| 3．3．3 结果与讨论 | 第360-365页 |
| 3．3．3．1 ATR-FTIR | 第360-361页 |
| 3．3．3．2 ESCA分析 | 第361-364页 |
| 3．3．3．3 WAXD分析 | 第364-365页 |
| 3．3．4 小结 | 第365页 |
| 3．4 微球的药剂学性质研究 | 第365-377页 |
| 3．4．1 仪器与试剂 | 第365页 |
| 3．4．2 方法 | 第365-368页 |
| 3．4．2．1 微球的形态学 | 第365页 |
| 3．4．2．2 粒径及Zeta电位测定 | 第365-366页 |
| 3．4．2．3 微球的冻干性质 | 第366页 |
| 3．4．2．4 载药量及包封率的测定 | 第366-367页 |
| 3．4．2．4．1 紫外扫描 | 第366页 |
| 3．4．2．4．2 色譜条件 | 第366页 |
| 3．4．2．4．3 标准曲线制备 | 第366-367页 |
| 3．4．2．4．4 HPLC测定方法专属性实验 | 第367页 |
| 3．4．2．4．5 包封率及载药量测定 | 第367页 |
| 3．4．2．4．5．1 白蛋白微球 | 第367页 |
| 3．4．2．4．5．2 包复的白蛋白微球 | 第367页 |
| 3．4．2．5 半乳糖含量的测定 | 第367-368页 |
| 3．4．2．5．1 半乳糖标准曲线 | 第367-368页 |
| 3．4．2．5．2 衍生物中半乳糖含量测定 | 第368页 |
| 3．4．2．5．3 包复微球中半乳糖含量测定 | 第368页 |
| 3．4．2．6 体外释药性质研究 | 第368页 |
| 3．4．2．7 初步稳定性研究 | 第368页 |
| 3．4．3 结果与讨论 | 第368-376页 |
| 3．4．3．1 微球的形态 | 第368-369页 |
| 3．4．3．2 粒径与ζ电位 | 第369-371页 |
| 3．4．3．3 微球的冻干性质 | 第371页 |
| 3．4．3．4 载药量与包封率的测定 | 第371-373页 |
| 3．4．3．4．1 HPLC色谱条件及系统适用性 | 第371-373页 |
| 3．4．3．4．2 载药量与包封率 | 第373页 |
| 3．4．3．5 半乳糖含量 | 第373页 |
| 3．4．3．6 体外释药性质 | 第373-375页 |
| 3．4．3．7 初步稳定性研究 | 第375-376页 |
| 3．4．4 小结 | 第376-377页 |
| 参考文献 | 第377-378页 |
| 第四章 微球中药物的组织靶向分布及药物动力学研究 | 第378-387页 |
| 4．1 试剂与仪器 | 第378页 |
| 4．2 实验方法 | 第378-380页 |
| 4．2．1 生物样品中5-Fu的HPLC测定方法 | 第378-379页 |
| 4．2．1．1 溶液的配置 | 第378页 |
| 4．2．1．2 血样的预处理 | 第378页 |
| 4．2．1．3 脏器组织预处理 | 第378-379页 |
| 4．2．1．4 HPLC色谱条件 | 第379页 |
| 4．2．1．5 标准曲线 | 第379页 |
| 4．2．1．6 血浆中药物浓度的测定 | 第379页 |
| 4．2．1．7 脏器组织中药物浓度的测定 | 第379页 |
| 4．2．2 5-Fu BSA微球大鼠体内分布及药物动力学研究 | 第379-380页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第380-386页 |
| 4．3．1 生物样品中5-Fu的HPLC测定方法 | 第380-381页 |
| 4．3．1．1 HPLC色谱条件 | 第380-381页 |
| 4．3．1．2 标准曲线 | 第381页 |
| 4．3．2 载药微球大鼠体内分布及药物动力学研究 | 第381-386页 |
| 4．4 小结 | 第386-387页 |
| 参考文献 | 第387页 |
| 第五章 结论与展望 | 第387-389页 |
| 有关生物医用高分子材料的代表作 | 第389-392页 |
| 英文简称一览表 | 第392-396页 |
| 致谢 | 第396页 |
