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AtCBF1基因转化水稻和拟南芥的比较研究

摘要第1-10页
Abstract第10-12页
第一部分 、 植物在低温环境中的信号转导途径及基因表达调控第12-30页
 一、 植物在环境胁迫中的一般信号转导途径第12页
 二、 植物对低温信号的感应和相关的感受器第12-15页
  1 植物对低温信号的感应第12-13页
  2 植物中的低温信号传感器第13-15页
   ·离子通道第13-14页
   ·蛋白受体传感器第14-15页
 三、 细胞内的第二信号系统第15-20页
  1 磷脂肌醇(InsP)第15-17页
   ·产生磷脂类第二信使分子的相关酶类第15-16页
   ·磷脂第16页
   ·肌醇三磷酸(IP_3)第16-17页
   ·磷脂酸(PA)第17页
   ·甘油二酯(DAG)第17页
  2 活性氧类物质(ROS)第17-18页
  3 Ca~(2+)第18-20页
   ·Ca~(2+)结合蛋白激酶(CDPKs)第19-20页
   ·钙调磷酸酶B类似蛋白(CBLs)第20页
   ·钙调蛋白(CaM)和钙调蛋白类似蛋白(CaM-like protein)第20页
 四、 低温信号传导过程中的磷酸蛋白激酶体系第20-21页
  1 蛋白激酶C(PKC)第21页
  2 钙和钙调蛋白依赖的蛋白激酶(CaMPK)第21页
  3 丝裂原激活蛋白激酶(MAPK)第21页
 五、 植物低温信号传导途径第21-26页
  1 ABA途径第21-22页
  2 CBFs/DREB1途径第22-26页
   ·CRT/DRE核心序列元件第22页
   ·CBF/DREB转录因子第22-23页
   ·CBF/DREB的基因表达调控第23-26页
     ·正调节物第23-25页
       ·第二信使分子第23-24页
       ·CBF表达诱导因子ICE(Inducer of CBF expression)第24页
       ·LOS第24页
       ·SFR6第24-25页
     ·负调节物第25-26页
       ·涉及胞质内Ca~(2+)的几个基因第25页
       ·HOS1第25页
       ·FRY1/2第25-26页
       ·ESK1第26页
  3 CBF/DREB1低温信号途径第26页
  4 非ABA和CBFs依赖的低温信号途径第26页
 六、 信号的消亡第26-28页
 七、 展望第28-30页
第二部分 实验论文第30-73页
 第一章 拟南芥CBF1基因在水稻中的转化和表型分析第30-53页
  第一节 农杆菌介导法将CBF1基因转入水稻及转基因植株的鉴定第30-41页
   1 前言第30页
   2 材料和方法第30-38页
   ·pCAMBIA1301-CBF1表达载体的构建第30-34页
     ·pBI121-CBF1质粒酶切获取目的片段第30-31页
     ·pCAMBIA1301质粒酶切获取载体片段第31页
     ·连接第31-32页
     ·重组DNA的转化第32-34页
       ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化第32-33页
       ·质粒DNA的碱裂解法提取和纯化第33-34页
   ·农杆菌介导的水稻转化第34-38页
     ·农杆菌感受态的制备和转化第34-35页
     ·转化前农杆菌的培养第35页
     ·水稻转化材料的准备第35页
       ·材料来源第35页
       ·水稻成熟胚愈伤组织的诱导第35页
     ·农杆菌浸润法转化水稻愈伤组织第35-36页
     ·潮霉素抗性的水稻愈伤组织筛选第36页
     ·抗性愈伤组织的诱导分化和生根第36页
       ·抗性愈伤组织的分化第36页
       ·分化苗的生根第36页
     ·抗性愈伤GUS和CBF1检测第36-37页
       ·抗性愈伤的GUS活性检测第36-37页
       ·抗性愈伤的CBF1检测第37页
         ·基因组DNA的提取第37页
         ·基因组DNA的CBF1的PCR检测第37页
     ·转化植物的炼苗和移栽第37页
     ·转化植株中的鉴定第37-38页
       ·转化植株的CBF1基因的PCR检测第37-38页
       ·转化植株的报告基因GUS检测第38页
   3 结果与分析第38-41页
   ·重组质粒的鉴定第38-39页
   ·转化植物的鉴定第39-41页
     ·转化植株及抗性愈伤的CBF1基因的PCR鉴定第39页
     ·转化植物及抗性愈伤的GUS活性检测第39-41页
  第二节 转CBF1基因水稻植株T1代的遗传分析第41-48页
   1 前言第41页
   2 材料和方法第41-44页
   ·潮霉素抗性和GUS活性检测第41-42页
     ·植株的培养第41页
     ·潮霉素抗性筛选及GUS活性检测体系第41-42页
   ·T1代中CBF1基因的PCR鉴定第42页
   ·T1代CBF1基因的southern分析第42-44页
   ·T1代中T-DNA插入位点检测第44页
   3 结果和分析第44-48页
   ·T1-1的潮霉素抗性及GUS活性检测第44-46页
   ·T1-2的潮霉素抗性及GUS活性检测第46页
   ·T1中CBF1基因的PCR检测第46页
   ·T1中CBF1基因的southern分析第46页
   ·T1代转基因植株中的T-DNA插入位点检测第46-48页
  第三节 转基因植株的抗冻性检测第48-53页
   1 前言第48页
   2 材料和方法第48-49页
   ·被试材料的制备第48-49页
   ·低温控制体系第49页
   ·转基因小苗的抗冻性表型测定第49页
   ·转基因小苗和抗性悬浮细胞的低温处理的脯氨酸含量的测定第49页
     ·转基因小苗低温处理脯氨酸含量测定第49页
     ·转基因悬浮细胞低温处理的脯氨酸含量测定第49页
   3 结果和分析第49-53页
   ·T1-1转基因15天小苗抗冻表型分析第49-50页
   ·T1-1和T1-2转基因苗低温处理的脯氨酸含量分析第50-51页
   ·转基因悬浮细胞低温处理的脯氨酸含量分析第51-53页
 第二章 拟南芥CBF1基因在拟南芥中的转化及其鉴定分析第53-67页
  第一节 农杆菌介导转化拟南芥和鉴定第53-62页
   1 前言第53页
   2 材料和方法第53-58页
   ·含有CBF1目的基因的农杆菌的准备第53页
   ·植物材料的培养第53-54页
   ·真空浸润法转化拟南芥植株第54页
     ·真空浸润前的准备第54页
     ·真空浸润操作步骤第54页
   ·直接浸润法转化拟南芥植株第54-55页
     ·浸润前准备第54-55页
     ·直接浸润操作第55页
   ·转化植株的筛选第55页
     ·转化植株的潮霉素鉴定第55页
     ·转化植株的GUS活性鉴定第55页
   ·转化植株的T-DNA插入位点确定第55-58页
     ·Tail-PCR引物第55-56页
     ·Tail-PCR反应程序第56页
     ·反应体系及相关操作第56-57页
     ·PCR产物纯化第57-58页
     ·数据分析第58页
   3 结果和分析第58-62页
   ·转化植株的潮霉素抗性第58页
   ·转化植株的GUS活性第58页
   ·真空浸润法和直接浸润法的比较第58-59页
   ·转化植株的T-DNA插入位点结果分析第59-62页
  第二节 转CBF1拟南芥的遗传分析及制作一些研究CBF1相关的遗传材料第62-67页
   1 前言第62-63页
   2 材料和方法第63-65页
   ·植株材料第63-64页
   ·杂交法制作遗传分析材料第64页
   ·转CBF1基因2个株系和杂交后代的纯系筛选第64页
   ·转基因法制作遗传分析材料第64-65页
     ·表达载体的结构第64页
     ·农杆菌介导转化拟南芥植株第64-65页
     ·转AEQ基因植株的卡那霉素抗性筛选第65页
     ·转AEQ基因植株纯系筛选第65页
     ·杂交法制作带有CBF1基因的转基因WS-AEQ植株第65页
   ·杂交后代的一系列处理第65页
   3 结果和分析第65-67页
   ·转基因CBF1植株的纯系筛选结果第65页
   ·杂交结果及纯系筛选的结果第65-66页
   ·转AEQ基因植株的卡那霉素抗性筛选第66页
   ·转AEQ基因植株的纯系筛选第66-67页
 第三章 过量表达拟南芥CBF1在水稻中和拟南芥中的区别第67-72页
  1 前言第67页
  2 材料和方法第67-68页
   ·转CBF1基因拟南芥的培养及表型观察第67页
   ·转CBF1基因水稻的培养及表型观察第67-68页
  3 结果和分析第68-70页
   ·拟南芥Abi4-1-CBF1表型变异情况统计第68页
   ·转基因水稻T1-1表型变异情况统计第68-70页
  4 讨论第70-72页
 第四章 展望第72-73页
参考文献第73-79页

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