| 第一章 文献综述 | 第1-23页 |
| ·海藻糖的基本性质 | 第8-9页 |
| ·海藻糖的生理功能 | 第9-10页 |
| ·海藻糖的应用 | 第10-12页 |
| ·海藻糖的生物合成和制备 | 第12-14页 |
| ·海藻糖合成酶的分离纯化 | 第14-15页 |
| ·海藻糖合成酶的固定化 | 第15-21页 |
| ·本实验室采用酶法合成海藻糖 | 第21-22页 |
| ·本课题的研究意义 | 第22-23页 |
| 第二章 实验材料及方法 | 第23-25页 |
| ·菌种和培养基 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23页 |
| ·分析方法 | 第23-25页 |
| 第三章 细胞破碎条件优化 | 第25-35页 |
| ·细胞破碎方法 | 第25-26页 |
| ·超声波法 | 第26-27页 |
| ·超声波频率的影响 | 第26-27页 |
| ·超声波破碎时间的影响 | 第27页 |
| ·化学渗透法 | 第27-31页 |
| ·添加螯合剂(EDTA) | 第28页 |
| ·表面活性剂 | 第28-29页 |
| ·甲苯破碎法 | 第29-31页 |
| ·多种方法复合破碎 | 第31-34页 |
| ·甲苯破碎与甲苯破碎联合超声破碎方法的比较 | 第31-32页 |
| ·破碎时添加EDTA的影响 | 第32-34页 |
| ·其他破碎方法 | 第34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| 第四章 海藻糖合成酶的初步纯化及酶保护剂的影响研究 | 第35-45页 |
| ·破碎液酶活分析 | 第35-36页 |
| ·固定化过程对细胞碎片酶活的影响 | 第36-41页 |
| ·思路的提出 | 第36-38页 |
| ·固定化过程对此双酶系统的优化影响 | 第38-41页 |
| ·酶保护剂对此双酶体系的影响 | 第41-44页 |
| ·载体壳聚糖的影响 | 第41-42页 |
| ·戊二醛单独影响 | 第42-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 第五章 MTSase和MTHase固定化过程 | 第45-61页 |
| ·固定化载体的选择 | 第45-47页 |
| ·各种载体的制备 | 第45页 |
| ·各种载体固定化效果的比较 | 第45-47页 |
| ·6201型担体固定化原理及实验步骤 | 第47-49页 |
| ·以6201型担体为载体固定化酶的反应原理 | 第47-48页 |
| ·实验步骤 | 第48-49页 |
| ·以6201型担体为载体固定化酶条件优化实验 | 第49-60页 |
| ·载体目数选择 | 第49页 |
| ·硅烷化时APTS浓度和pH值的影响 | 第49-51页 |
| ·戊二醛活化条件的影响 | 第51-53页 |
| ·固定化时酶交联条件的研究 | 第53-54页 |
| ·固定化酶活的酶活回收率 | 第54-55页 |
| ·固定化酶的pH效应 | 第55页 |
| ·固定化酶的温度效应 | 第55-56页 |
| ·底物浓度对海藻糖合成的影响 | 第56-57页 |
| ·残酶液反应结果分析 | 第57-59页 |
| ·最佳结果HPLC谱图分析 | 第59-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 第六章 结论与建议 | 第61-67页 |
| ·主要结论 | 第61-62页 |
| ·问题与建议 | 第62-67页 |
| 附录 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读学位期间发表论文目录 | 第70页 |