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海洋假别单胞菌CY24的琼胶酶基因的克隆、重组表达及酶学性质研究

0 前言第1-22页
一 菌种的分离鉴定与发酵条件优化第22-27页
 1 菌种的分离鉴定第22-23页
   ·材料与方法第22页
     ·材料第22页
     ·琼胶酶活力测定第22页
     ·菌种的采集第22页
     ·菌种的分离第22页
     ·菌种的鉴定第22页
   ·结果第22-23页
     ·菌种的分离第22-23页
     ·菌种的鉴定第23页
 2 发酵条件优化第23-26页
   ·材料和方法第23-24页
     ·材料第23页
     ·培养条件第23页
     ·培养时间优化第23-24页
     ·培养温度优化第24页
     ·培养基成分的正交实验第24页
   ·结果第24-26页
     ·培养时间优化第24页
     ·培养温度优化第24页
     ·培养基成分优化第24-26页
 3 讨论第26-27页
二 基因克隆与序列分析第27-41页
 1 基因克隆第27-35页
   ·材料与方法第27-32页
     ·材料第27页
     ·基因组DNA的制备第27-28页
     ·基因组DNA的酶切第28页
     ·基因组DNA的纯化第28页
     ·质粒pBluescriptⅡKS(+)DNA的制备第28-30页
     ·质粒pBS的酶切第30页
     ·质粒pBS的去磷酸化处理第30页
     ·目的片断与载体的连接第30页
     ·E.coli DH5α感受态细胞的制备第30-31页
     ·转化第31页
     ·阳性克隆的筛选第31-32页
   ·结果第32-35页
     ·基因组DNA的制备第32页
     ·载体pBS的制备第32-33页
     ·阳性克隆的筛选与鉴定第33-35页
 2 阳性克隆pA5的测序及序列分析第35-39页
   ·方法第35页
   ·序列分析第35-39页
 3 讨论第39-41页
三 亚克隆的建立及琼胶酶基因agaA的序列分析第41-51页
 1 亚克隆的建立第41-44页
   ·材料与方法第41-42页
     ·材料第41页
     ·亚克隆pS2400的建立第41-42页
     ·亚克隆pS1300的建立第42页
   ·结果第42-44页
     ·亚克隆pS2400第42-44页
     ·亚克隆pS1300第44页
 2 序列分析第44-49页
   ·GenBank Accession Number第44-46页
   ·琼胶酶基因agaA的序列分析第46-49页
 3 讨论第49-51页
四 重组表达与目的蛋白的纯化第51-59页
 1 基因表达与目的蛋白的检测第52-57页
   ·材料和方法第52-56页
     ·材料第52-54页
     ·pET-24a(+)载体的制备第54-55页
     ·目的基因的准备第55页
     ·重组表达载体的建立第55页
     ·目的蛋白的诱导表达与表达产物的检测第55-56页
   ·结果第56-57页
     ·pET-24a(+)载体的制备第56-57页
     ·目的基因的制备第57页
     ·表达产物的检测第57页
 2 目的蛋白的纯化第57页
   ·材料和方法第57页
     ·材料第57页
     ·目的蛋白的纯化与检测第57页
   ·结果第57页
 3 讨论第57-59页
五 重组酶性质研究第59-66页
 1 基本酶学性质第59-61页
   ·材料和方法第59页
     ·材料第59页
     ·反应最适温度第59页
     ·温度稳定性第59页
     ·反应最适pH第59页
     ·pH稳定性第59页
     ·最适底物浓度第59页
     ·最适离子强度第59页
   ·结果第59-61页
     ·琼胶酶的最适反应温度第59页
     ·琼胶酶的温度稳定性第59-60页
     ·琼胶酶反应最适pH第60页
     ·琼胶酶的pH稳定性第60页
     ·最适底物浓度第60-61页
     ·最适Na~+离子强度第61页
 2 Pseudoalteromonas sp.CY24中琼胶酶A5的α,β类型的确定第61-63页
   ·材料与方法第61-62页
     ·材料第61-62页
     ·α,β类型的确定第62页
   ·结果第62-63页
 3 重组琼胶酶降解终产物的研究第63-64页
   ·材料与方法第63-64页
     ·材料第63页
     ·方法第63-64页
   ·结果第64页
 4 讨论第64-66页
参考文献第66-71页
致谢第71页

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