| Ⅰ.英文缩写名词 | 第1-7页 |
| Ⅱ.中文摘要 | 第7-10页 |
| Ⅲ.英文摘要 | 第10-14页 |
| Ⅳ.前言 | 第14-16页 |
| Ⅴ.实验材料 | 第16-19页 |
| 1.主要仪器、设备 | 第16-17页 |
| 2.主要试剂 | 第17-19页 |
| Ⅵ.实验方法 | 第19-34页 |
| 1.主要溶液配制 | 第19-20页 |
| 2.实验方法 | 第20-34页 |
| 1) 球囊导管损伤兔髂动脉模型的建立 | 第20-21页 |
| 2) 组织制备 | 第21页 |
| 3) HE染色 | 第21页 |
| 4) 弹力-VG染色 | 第21页 |
| 5) 显微镜-微机图象分析 | 第21页 |
| 6) 发色底物显色法测血管壁tPA活性 | 第21-22页 |
| 7) 蛋白质定量—考马斯亮蓝法 | 第22-23页 |
| 8) 细胞培养 | 第23页 |
| 9) 平滑肌细胞鉴定 | 第23-25页 |
| (1) 形态学 | 第23-24页 |
| (2) 免疫组化 | 第24-25页 |
| 10) ~3H-TdR参入 | 第25页 |
| 11) MTT法细胞计数 | 第25-26页 |
| 12) 大肠杆菌感受态的制备与质粒转化 | 第26页 |
| 13) 质粒DNA小量制备与酶切分析 | 第26-28页 |
| 14) 质粒DNA的大量制备 | 第28-29页 |
| 15) 聚乙二醇(PEG)沉淀法纯化质粒DNA | 第29页 |
| 16) cDNA探针的标记 | 第29-31页 |
| (1) 随机引物法地高辛标记及检测 | 第29-30页 |
| (2) 随机引物法同位素标记探针 | 第30-31页 |
| 17) 原位杂交 | 第31-32页 |
| 18) 细胞总RNA的提取 | 第32-33页 |
| 19) Northern印迹杂交 | 第33页 |
| 20) 统计学处理 | 第33-34页 |
| Ⅶ.实验结果 | 第34-49页 |
| 1.tPA在兔髂动脉损伤模型血管壁的表达 | 第34-41页 |
| 1) 球囊导管损伤后SMC的增生、迁移 | 第34-38页 |
| 2) 血管损伤过程中tPA活性的变化 | 第38-39页 |
| 3) 损伤后血管壁tPA mRNA的表达 | 第39-41页 |
| 2.tPA、PAI-1对体外血管SMC增生的作用及其分子生物学机制 | 第41-49页 |
| 1) 正常血脂条件下,tPA对SMC生长的影响 | 第41-42页 |
| 2) 高脂状态下,tPA对SMC生长的影响 | 第42页 |
| 3) PAI-1对tPA促SMC增生的抑制作用 | 第42-43页 |
| 4) tPA对人SMC原癌基因c-myc mRNA表达的影响 | 第43-45页 |
| 5) tPA对血管SMC增生过程中PKC的影响 | 第45-46页 |
| 6) c-myc反意ODNs对tPA刺激的SMC增生的抑制作用 | 第46-49页 |
| Ⅷ.讨论 | 第49-56页 |
| 1.球囊导管致内皮剥脱后新生内膜的产生 | 第49-50页 |
| 2.tPA、PAI-1在损伤后血管SMC增生和迁移过程中的作用 | 第50-52页 |
| 3.纤溶系统与高血脂在AS及PTCA术后再狭窄形成中的关系 | 第52-53页 |
| 4.tPA,PAI-1对SMC增殖的分子作用机制 | 第53-54页 |
| 5.c-myc反意ODN对SMC增生的抑制作用 | 第54-55页 |
| 6.结论 | 第55-56页 |
| Ⅸ.参考文献 | 第56-62页 |
| Ⅹ.文献综述 | 第62-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
