| 主要英文缩略词 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 材料与方法 | 第14-28页 |
| 1 实验动物 | 第14页 |
| 2 主要仪器设备 | 第14-15页 |
| 3 一次性耗材及试剂 | 第15-16页 |
| 4 药品 | 第16页 |
| 5 实验分组和随机方法 | 第16页 |
| 6 实验鼠的麻醉与手术操作 | 第16-19页 |
| ·麻醉方法和机械通气 | 第16-18页 |
| ·动静脉插管置入术和肝素化 | 第18-19页 |
| 7 供血鼠的采血操作 | 第19页 |
| 8 CPB 的建立与管理 | 第19-22页 |
| ·CPB 管路组成和预充 | 第19-21页 |
| ·CPB 转流前准备 | 第21页 |
| ·CPB 转流期间的管理 | 第21页 |
| ·CPB 停机后管理 | 第21-22页 |
| 9 观察和监测的一般项目 | 第22页 |
| 10 标本采集及保存 | 第22页 |
| 11 电镜检测 | 第22-23页 |
| 12 BDNFm RNA 检测 | 第23-27页 |
| ·实验基本原理 | 第23页 |
| ·Trizol 一步法提取组织总 RNA | 第23-25页 |
| ·总 RNA 逆转录合成cDNA | 第25-26页 |
| ·PCR 反应 | 第26-27页 |
| 13 统计学分析 | 第27-28页 |
| 结果 | 第28-36页 |
| 1 两组动物的生理指标和实验经过 | 第28页 |
| 2 海马的电镜超微结构 | 第28页 |
| 3 海马 BDNFm RNA 的表达 | 第28-36页 |
| 讨论 | 第36-46页 |
| 1 大鼠 CPB 模型的评价 | 第36-39页 |
| 2 CPB 脑损伤的机制探讨 | 第39-42页 |
| 3 CPB 对 BDNFm RNA 表达的影响及其意义 | 第42-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 综述 | 第55-73页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |