缩略词表 | 第9-10页 |
中文摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
引言 | 第14-16页 |
第一部分 PNS及 PPD对 Apo E~(-/-)小鼠AS相关病变的影响 | 第16-32页 |
材料与方法 | 第16-21页 |
1.实验动物与饲养条件 | 第16页 |
2.试剂及仪器 | 第16-17页 |
2.1 主要试剂 | 第16页 |
2.2 仪器和耗材 | 第16-17页 |
2.3 药物及试剂配制 | 第17页 |
3.实验方法 | 第17-21页 |
3.1 动物分组、给药 | 第17页 |
3.2 取材 | 第17-18页 |
3.3 小鼠外耳廓及心脏表面血流监测 | 第18页 |
3.4 血脂检测 | 第18页 |
3.5 脾脏指数计算 | 第18页 |
3.6 动脉血管油红O染色 | 第18页 |
3.7 主动脉瓣膜区石蜡包埋、切片及苏木素-伊红(HE)染色 | 第18-19页 |
3.8 酶联免疫双抗夹心法(ELISA)检测血清VEGF、LOX-1 水平 | 第19页 |
3.9 统计学分析 | 第19-21页 |
结果 | 第21-28页 |
1.动物一般情况 | 第21页 |
2.主动脉血管脂质斑块沉积情况 | 第21-23页 |
3.小鼠血脂水平 | 第23-24页 |
4.HE染色观察主动脉窦管腔斑块情况 | 第24-25页 |
5.小鼠体表及心脏微循环血流灌注量 | 第25-26页 |
6.小鼠血清VEGF、LOX-1 水平 | 第26-28页 |
分析与讨论 | 第28-32页 |
1.中医学对AS的认识 | 第28页 |
2.干预药物和动物模型的选择 | 第28-29页 |
3.PNS及 PPD对 AS相关病理改变的影响 | 第29-31页 |
3.1 PNS及 PPD对 AS模型脂代谢的影响 | 第29-30页 |
3.2 PNS及 PPD对 AS模型斑块病理进程的影响 | 第30页 |
3.3 PNS及 PPD对 AS模型VEGF的影响 | 第30-31页 |
3.4 PNS及 PPD对 AS模型微循环灌注的影响 | 第31页 |
4.小结 | 第31-32页 |
第二部分 PNS及 PPD对 HUVECs作用的机制研究 | 第32-53页 |
材料与方法 | 第32-41页 |
1.实验细胞 | 第32页 |
2.试剂及仪器 | 第32-34页 |
2.1 主要试剂 | 第32-33页 |
2.2 仪器和耗材 | 第33-34页 |
2.3 药物及试剂配制 | 第34页 |
3.实验方法 | 第34-41页 |
3.1 细胞培养 | 第34页 |
3.2 CCK8 法检测HUVECs活力 | 第34-35页 |
3.3 透射电镜观察各组细胞caveolae结构变化 | 第35页 |
3.4 免疫荧光法检测各组细胞神经节苷酯GM1变化 | 第35-36页 |
3.5 免疫荧光法检测各组细胞Cav1及其磷酸化蛋白变化情况 | 第36-37页 |
3.6 HUVECs总蛋白及胞浆蛋白的提取与制备 | 第37页 |
3.7 Western Blot法检测HUVECs总蛋白及胞浆蛋白的表达 | 第37-38页 |
3.8 RT-PCR检测细胞Cav1、VEGF、ICAM-1 mRNA相对表达量 | 第38-39页 |
3.9 Fluo-4 AM检测细胞内钙离子浓度 | 第39-40页 |
3.10 统计学处理 | 第40-41页 |
结果 | 第41-50页 |
1.细胞用药浓度及用药时间的选择 | 第41-42页 |
1.1 不同浓度的PNS及 PPD作用HUVECs24h对细胞活力的影响 | 第41页 |
1.2 100μmol/L PPD作用HUVECs不同时间对细胞活力的影响 | 第41页 |
1.3 胆固醇耗竭剂MβCD使用的最佳作用浓度测定 | 第41-42页 |
1.4 MβCD预处理细胞后PNS及 PPD对 HUVECs细胞活力的影响 | 第42页 |
2.PNS单体成分对caveolae及其关键蛋白定位及表达的影响 | 第42-48页 |
2.1 PPD作用HUVECs不同时间对caveolae形态结构的影响 | 第42-43页 |
2.2 PNS不同单体成分对caveolae神经节苷酯GM1定位的影响 | 第43-44页 |
2.3 PPD对caveolae关键蛋白Cav1及pCav1细胞内定位的影响 | 第44-45页 |
2.4 PPD对 HUVECs Cav1 表达的影响 | 第45-46页 |
2.5 PPD对 HUVECs钙离子通道的影响 | 第46-48页 |
3.PNS及 PPD对 HUVECs VEGF、ICAM-1、ox-LDLR mRNA表达的影响 | 第48-50页 |
分析与讨论 | 第50-53页 |
1.Caveolae/Cav1 的概述 | 第50页 |
2.PNS单体成分影响HUVECs caveolae/Cav1 的结构和表达 | 第50-51页 |
3.PNS及单体成分通过调控caveolae/Cav1 抑制细胞增殖 | 第51-52页 |
4.小结 | 第52-53页 |
结论 | 第53-54页 |
致谢 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
附录 | 第62-80页 |
附录一:文献综述 | 第62-68页 |
参考文献 | 第65-68页 |
附录二:在校期间发表学术论文 | 第68-80页 |
附录三:参加学术会议情况 | 第80页 |