| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| ·蛛网膜下腔出血与神经细胞凋亡 | 第14页 |
| ·细胞凋亡与凋亡调控因子 | 第14-16页 |
| ·钾离子通道 | 第16-17页 |
| ·实验目的及意义 | 第17页 |
| ·参考文献 | 第17-20页 |
| 第一节:蛛网膜下腔出血大鼠模型的制备 | 第20-23页 |
| ·实验材料及仪器 | 第20-21页 |
| ·试剂 | 第20页 |
| ·仪器 | 第20页 |
| ·二氮嗪溶液的配制 | 第20-21页 |
| ·实验动物与分组 | 第21页 |
| ·SAH模型制备 | 第21-22页 |
| ·动物准备 | 第21页 |
| ·SAH的产生 | 第21-22页 |
| ·给药 | 第22页 |
| ·动物处死方法及标本留存 | 第22页 |
| ·结果 | 第22-23页 |
| ·一般情况 | 第22页 |
| ·大体标本的观察 | 第22-23页 |
| 第二节:海马组织目的凋亡因子mRNA表达的测定 | 第23-29页 |
| ·实验材料及仪器 | 第23-24页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·主要仪器 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·总RNA抽提 | 第24页 |
| ·RNA逆转录 | 第24-25页 |
| ·Real-time PCR检测 | 第25-26页 |
| ·统计方法 | 第26页 |
| ·实验结果 | 第26-29页 |
| ·Bcl-2表达趋势 | 第26-27页 |
| ·Bax表达趋势 | 第27-28页 |
| ·Caspase3表达趋势 | 第28-29页 |
| 第三节 海马组织目的凋亡因子蛋白表达的测定 | 第29-38页 |
| ·实验材料及仪器 | 第29-30页 |
| ·试剂 | 第29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·主要溶液配制 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-33页 |
| ·组织中总蛋白样品的提取 | 第30页 |
| ·蛋白含量的测定 | 第30-31页 |
| ·SDS—PAGE电泳 | 第31-32页 |
| ·转膜 | 第32页 |
| ·免疫反应 | 第32-33页 |
| ·化学发光,显影,摄取图像 | 第33页 |
| ·凝胶图象分析 | 第33页 |
| ·统计方法 | 第33页 |
| ·实验结果 | 第33-38页 |
| 第四节 讨论 | 第38-55页 |
| ·关于蛛网膜下腔出血建模的讨论 | 第38-41页 |
| ·蛛网膜下腔出血、凋亡、凋亡因子 | 第41-44页 |
| ·ATP敏感性钾离子通道 | 第44-48页 |
| ·讨论二氮嗪对大鼠SAH模型海马Bcl-2、Bax及Caspase3的影响 | 第48-50页 |
| ·展望与反思 | 第50页 |
| ·参考文献 | 第50-55页 |
| 附图 | 第55-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第60-61页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第61页 |