| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 缩略表 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文章综述 | 第13-27页 |
| ·ABA的发现,分布与高等植物体内ABA的合成 | 第13-19页 |
| ·ABA的合成部位 | 第13-14页 |
| ·ABA生物合成缺陷型突变体 | 第14页 |
| ·ABA生物合成途径 | 第14-15页 |
| ·ABA生物合成酶及其限制性调控 | 第15-19页 |
| ·ABA的分解代谢 | 第19页 |
| ·ABA的生理作用 | 第19-20页 |
| ·促进气孔关闭 | 第19页 |
| ·促进休眠 | 第19-20页 |
| ·提高抗逆性 | 第20页 |
| ·ABA在植物干旱胁迫反应中的作用 | 第20-23页 |
| ·ABA调节气孔关闭,降低蒸腾失水,提高植物抗旱能力 | 第20-21页 |
| ·ABA诱导相关基因产物产生,保护细胞结构,调节植物生理、代谢变化 | 第21-23页 |
| ·ABA合成的信号转导途径 | 第23-24页 |
| ·ABA结合位点与受体 | 第23页 |
| ·信号转换 | 第23-24页 |
| ·ABA的抗胁迫机制 | 第24-26页 |
| ·ABA参与了气孔的调控 | 第25页 |
| ·基因和蛋白表达调控 | 第25-26页 |
| ·选题背景、目的和意义 | 第26-27页 |
| 第二章 材料与方法 | 第27-40页 |
| ·材料与方法 | 第27-28页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·菌株和载体 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27-28页 |
| ·培养基 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28页 |
| ·所用引物 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-40页 |
| ·材料培养 | 第29-30页 |
| ·RNA的提取及纯化 | 第30-31页 |
| ·棉花cDNA第一条连的合成 | 第31页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因主体片段的克隆 | 第31-34页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因的cDNA5’和3’末端快速扩增—RACE | 第34-36页 |
| ·棉花GhNCED1基因全长的获得和GhNCED2基因全长的获得 | 第36页 |
| ·生物信息学分析 | 第36页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因结构的初步分析 | 第36-37页 |
| ·半定量RT-PCR方法检测棉花GhNCED1和GhNCED2基因在干旱胁迫下的表达 | 第37-38页 |
| ·半定量RT-PCR法检测GhNCED1和GhNCED2基因在棉花不同组织中的表达 | 第38页 |
| ·干旱胁迫下棉花幼苗叶片中ABA含量的测定 | 第38-40页 |
| 第三章 结果与分析 | 第40-53页 |
| ·RNA提取 | 第40页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因主体片段的扩增结果 | 第40-41页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因3’端的克隆结果 | 第41-42页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因5’端的克隆结果 | 第42页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因全长的获得 | 第42-45页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因的氨基酸序列分析 | 第45-48页 |
| ·GhNCED1和GhNCED2基因完整编码框及相应基因组序列的克隆 | 第48-49页 |
| ·干旱胁迫对棉花GhNCED1和GhNCED2基因表达的影响 | 第49-50页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2在棉花不同组织中的特异性表达 | 第50页 |
| ·棉花幼苗叶片ABA的提取及其在干旱胁迫下含量的变化 | 第50-53页 |
| ·分析条件选择 | 第50-51页 |
| ·脱落酸的分离与测定 | 第51-52页 |
| ·回收试验 | 第52-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-56页 |
| ·总RNA的提取 | 第53页 |
| ·棉花GhNCED1和GhNCED2基因的克隆 | 第53-54页 |
| ·利用HPLC法检测棉花幼苗叶片中的ABA | 第54页 |
| ·干旱胁迫下GhNCED1l和GhNCED2的表达及其和ABA积累的关系 | 第54-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 作者简介 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 石河子大学硕士研究生学位论文 | 第65页 |
