| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 符号清单 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-18页 |
| 活性包涵体 | 第12-14页 |
| 尿卟啉原Ⅲ甲基化酶 | 第14-15页 |
| 丝氨酸消旋酶 | 第15-16页 |
| D-氨基酸氧化酶 | 第16-18页 |
| 引言 | 第18-19页 |
| 1 材料与方法 | 第19-25页 |
| 1.1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1.1 菌株来源 | 第19页 |
| 1.1.2 质粒来源 | 第19页 |
| 1.1.3 基因来源 | 第19页 |
| 1.1.4 主要试剂 | 第19页 |
| 1.1.5 部分缓冲液的配置 | 第19-20页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第20页 |
| 1.3 实验方法 | 第20-25页 |
| 1.3.1 表达载体构建 | 第20-21页 |
| 1.3.2 大麦UMT8和UMT8-ELK16的细胞、破碎上清、沉淀的荧光观察 | 第21页 |
| 1.3.3 大麦UMT8和UMT8-ELK16的诱导表达 | 第21页 |
| 1.3.4 大麦UMT8和UMT8-ELK16细胞破碎上清的紫外光谱扫描 | 第21页 |
| 1.3.5 大麦UMT8-ELK16细胞破碎上清和沉淀的激发光和发射光光谱扫描 | 第21-22页 |
| 1.3.6 大麦UMT8和UMT8-ELK16的破碎上清、沉淀的荧光强度测定 | 第22页 |
| 1.3.7 玉米SR在不同温度下的诱导表达 | 第22页 |
| 1.3.8 玉米SR活性包涵体的湿重分析 | 第22-23页 |
| 1.3.9 可溶的和不可溶的玉米SR蛋白的活性分析 | 第23页 |
| 1.3.10 SUMO-hDAAO的表达水平分析 | 第23-24页 |
| 1.3.11 SUMO-hDAAO包涵体产量的测定 | 第24页 |
| 1.3.12 表达SUMO-hDAAO的破碎上清和包涵体的活性分析 | 第24页 |
| 1.3.13 蛋白表达在包涵体中对细胞生长的影响 | 第24-25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.1 大麦UMT8和UMT8-ELK16的细胞、破碎上清及沉淀的荧光观察 | 第25页 |
| 2.2 大麦UMT8和UMT8-ELK16的诱导表达 | 第25-26页 |
| 2.3 表达大麦UMT8和UMT8-ELK16破碎上清的紫外可见光谱扫描 | 第26-27页 |
| 2.4 大麦UMT8-ELK16激发光谱和发射光谱扫描 | 第27页 |
| 2.5 大麦UMT8和UMT8-ELK16的破碎上清、沉淀的荧光强度测定 | 第27-28页 |
| 2.6 玉米SR在不同温度下的诱导表达 | 第28页 |
| 2.7 玉米SR活性包涵体的湿重分析 | 第28-29页 |
| 2.8 玉米SR上清和沉淀的酶活性分析 | 第29-30页 |
| 2.9 重组hDAAO蛋白表达水平的定性及定量分析 | 第30-31页 |
| 2.10 表达SUMO-hDAAO上清和沉淀的活性分析 | 第31-32页 |
| 2.11 形成包涵体对细胞生长的影响 | 第32-33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| 3.1 大麦UMT8及UMT8-ELK16的荧光性质分析 | 第33页 |
| 3.2 玉米SR破碎上清和沉淀的性质分析 | 第33页 |
| 3.3 可溶的和不可溶的SUMO-hDAAO蛋白的性质分析 | 第33-35页 |
| 4 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-44页 |
| 个人简介 | 第44-45页 |
| 附录A | 第45页 |
