| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 研究现状、成果 | 第15-18页 |
| 研究内容、目的与方法 | 第18-20页 |
| 一、敲低Pin1对EAE的发生发展的影响 | 第20-29页 |
| 1.1 实验的对象、材料与方法 | 第20-22页 |
| 1.1.1 实验所需的小鼠动物及饲养管理 | 第20页 |
| 1.1.2 动物EAE模型构建所需要的试剂及仪器 | 第20-21页 |
| 1.1.3 动物实验中所需要的试剂配制 | 第21页 |
| 1.1.4 实验性脑脊髓炎EAE的诱导、临床评分及疗效分析 | 第21-22页 |
| 1.1.5 数据处理和统计方法 | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-26页 |
| 1.2.1 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的临床症状评分下降 | 第22-23页 |
| 1.2.2 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的发病率下降 | 第23-24页 |
| 1.2.3 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的平均发病最高分明显下降 | 第24页 |
| 1.2.4 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的平均发病总分明显下降 | 第24-25页 |
| 1.2.5 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的脊髓炎症程度下降 | 第25-26页 |
| 1.2.6 敲低Pin1表达后,小鼠实验性脑脊髓炎EAE的脊髓脱髓鞘下降 | 第26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-28页 |
| 1.4 小结 | 第28-29页 |
| 二、Pin1对EAE小鼠T细胞亚群分化的影响 | 第29-36页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-31页 |
| 2.1.1 小鼠动物实验 | 第29页 |
| 2.1.2 主要材料、试剂与仪器设备 | 第29-30页 |
| 2.1.3 实验所需的试剂配制 | 第30页 |
| 2.1.4 分离小鼠外周淋巴组织中的淋巴细胞 | 第30页 |
| 2.1.5 分离小鼠脊髓中的淋巴细胞 | 第30页 |
| 2.1.6 Pin1敲低后Th细胞亚群的流式检测 | 第30-31页 |
| 2.1.7 数据处理和统计方法 | 第31页 |
| 2.2 结果 | 第31-33页 |
| 2.2.1 敲低Pin1抑制了EAE小鼠外周淋巴结中Th17细胞亚群的分化与发育 | 第31-32页 |
| 2.2.2 敲低Pin1抑制了EAE小鼠外周淋巴结中Th1细胞亚群的分化与发育 | 第32-33页 |
| 2.2.3 敲低Pin1降低了EAE小鼠脊髓中Th17细胞亚群的分化与发育 | 第33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-36页 |
| 三、敲低Pin1对EAE小鼠抗病作用的体外细胞研究 | 第36-44页 |
| 3.1 对象和方法 | 第36-39页 |
| 3.1.1 小鼠动物实验 | 第36页 |
| 3.1.2 主要材料、试剂与仪器设备 | 第36-37页 |
| 3.1.3 外周淋巴组织单个核细胞增殖检测 | 第37页 |
| 3.1.4 Pin1敲低后小鼠脾脏DC细胞的表面标记表达分析 | 第37页 |
| 3.1.5 Pin1敲低后的树突细胞DC细胞基因表达分析 | 第37-38页 |
| 3.1.6 Pin1敲低后的淋巴细胞基因mRNA表达 | 第38-39页 |
| 3.1.7 数据处理和统计方法 | 第39页 |
| 3.2 结果 | 第39-41页 |
| 3.2.1 敲低Pin1减弱了MOG抗原特异性T细胞反应 | 第39页 |
| 3.2.2 敲低Pin1影响DC细胞的成熟及其功能 | 第39-40页 |
| 3.2.3 敲低Pin1促进树突细胞DC抗炎基因的表达,抑制促炎基因的表达 | 第40-41页 |
| 3.2.4 敲低Pin1抑制淋巴细胞EL4细胞促炎基因的表达 | 第41页 |
| 3.3 讨论 | 第41-42页 |
| 3.4 小结 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第52-53页 |
| 综述 Pin1的作用机制及临床研究进展 | 第53-66页 |
| 综述参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67页 |
