| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-34页 |
| 1.1 超小二氧化硅纳米颗粒的概述 | 第14-15页 |
| 1.2 超小二氧化硅纳米颗粒的合成机理以及制备方法 | 第15-26页 |
| 1.2.1 制备超小实心二氧化硅纳米颗粒(SSNs) | 第16-20页 |
| 1.2.2 制备超小介孔二氧化硅纳米颗粒(MSNs) | 第20-26页 |
| 1.3 超小介孔二氧化硅纳米颗粒的功能化修饰 | 第26-27页 |
| 1.3.1 非表面修饰法 | 第26页 |
| 1.3.2 表面修饰法 | 第26-27页 |
| 1.4 超小介孔二氧化硅纳米颗粒的毒性及应用研究 | 第27-30页 |
| 1.4.1 基因载体 | 第27-28页 |
| 1.4.2 药物载体 | 第28页 |
| 1.4.3 生物应用 | 第28-30页 |
| 1.5 脂质体包裹超小介孔二氧化硅纳米颗粒的应用 | 第30-32页 |
| 1.5.1 脂质体的概述 | 第30页 |
| 1.5.2 国内外脂质体包裹介孔二氧化硅纳米颗粒载药的研发现状 | 第30-32页 |
| 1.6 本论文的意义和目标 | 第32-34页 |
| 第二章 合成超小介孔二氧化硅纳米颗粒 | 第34-42页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第34-35页 |
| 2.3 实验方法 | 第35-36页 |
| 2.3.1 L-赖氨酸为催化剂合成超小MSNs-PEG | 第35-36页 |
| 2.3.2 氨水为催化剂合成超小MSNs-PEG | 第36页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第36-41页 |
| 2.4.1 赖氨酸为催化剂合成超小MSNs-PEG及其表征 | 第36-38页 |
| 2.4.2 氨水为催化剂合成MSNs-PEG及其表征 | 第38-41页 |
| 2.5 小结 | 第41-42页 |
| 第三章 功能化的超小介孔二氧化硅纳米颗粒 | 第42-58页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第43-44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-47页 |
| 3.3.1 超小荧光介孔二氧化硅纳米颗粒的合成 | 第44-45页 |
| 3.3.2 FMSNs-PEG进行氨基修饰 | 第45-47页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第47-57页 |
| 3.4.1 合成FMSNs和FMSNs-PEG | 第47-51页 |
| 3.4.2 FMSNs和FMSNs-PEG的光谱表征 | 第51-52页 |
| 3.4.3合成超小FMSNs-PEG-NH_2 | 第52-57页 |
| 3.5 小结 | 第57-58页 |
| 第四章 超小MSNs载药系统的构建及初步药效的评价 | 第58-75页 |
| 4.1 引言 | 第58页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第58-60页 |
| 4.3 实验方法 | 第60-64页 |
| 4.3.1 超小FMSNs、FMSNs-PEG和FMSNs-PEG-NH_2载药体系的合成 | 第60-61页 |
| 4.3.2 载药量的测定方法 | 第61页 |
| 4.3.3 DOX吸光度及浓度的标准曲线 | 第61-62页 |
| 4.3.4 超小FMSNs、FMSNs-PEG和FMSNs-PEG-NH_2载药体系的释放 | 第62-63页 |
| 4.3.5 细胞体外培养 | 第63页 |
| 4.3.6 超小FMSNs和FMSNs-PEG细胞毒性测试 | 第63-64页 |
| 4.3.7 统计学分析 | 第64页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第64-74页 |
| 4.4.1 DOX标准曲线的建立 | 第64-66页 |
| 4.4.2 超小FMSNs、FMSNs-PEG和FMSNs-PEG-NH_2载药量的测定 | 第66-67页 |
| 4.4.3 超小FMSNs、FMSNs-PEG和FMSNs-PEG-NH_2药物缓释研究 | 第67-71页 |
| 4.4.4 pH影响DOX缓释的机理 | 第71-72页 |
| 4.4.5 超小FMSNs-PEG、FMSNs和FMSNs-PEG-NH_2细胞毒性测试 | 第72页 |
| 4.4.6 荧光成像 | 第72-74页 |
| 4.5 小结 | 第74-75页 |
| 第五章 基于超小MSNs多功能载药体系的构建以及初步药效的评价 | 第75-97页 |
| 5.1 引言 | 第75-76页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第76-77页 |
| 5.2.1 透射电镜分析 | 第76-77页 |
| 5.2.2 脂质体粒径及Zeta电位分析 | 第77页 |
| 5.2.3 荧光分光光度计分析 | 第77页 |
| 5.3 实验方法 | 第77-82页 |
| 5.3.1 制备Blank Liposome | 第77-78页 |
| 5.3.2 制备FMSNs-PEG@Liposome | 第78页 |
| 5.3.3 FMSNs-PEG@Liposome制备工艺的优化 | 第78-79页 |
| 5.3.4 制备DOX@Liposome和FMSNs-PEG@Liposome+DOX | 第79-80页 |
| 5.3.5 FMSNs-PEG@Liposome+DOX的体外释放实验 | 第80页 |
| 5.3.6 Blank Liposome和FMSNs-PEG@Liposome细胞毒性测试 | 第80-82页 |
| 5.3.7 统计学分析 | 第82页 |
| 5.4 实验结果与分析 | 第82-96页 |
| 5.4.1 Blank Liposome粒径稳定性的考察 | 第82-83页 |
| 5.4.2 FMSNs-PEG@Liposome的表征 | 第83-85页 |
| 5.4.3 FMSNs-PEG@Liposome包封率的测定 | 第85-86页 |
| 5.4.4 工艺条件的优化对于FMSNs-PEG@Liposome包封率的提高 | 第86-88页 |
| 5.4.5 荧光图谱表征 | 第88页 |
| 5.4.6 DOX@Liposome和FMSNs-PEG@Liposome+DOX的包封率 | 第88-92页 |
| 5.4.7 FMSNs-PEG@Liposome+DOX的体外释放实验 | 第92-93页 |
| 5.4.8 细胞毒性实验研究 | 第93-95页 |
| 5.4.9 荧光成像 | 第95-96页 |
| 5.5 小结 | 第96-97页 |
| 总结与展望 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-112页 |
| 附录 | 第112-114页 |
| 作者在攻读博士学位期间公开发表的论文 | 第114-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
