| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 翅果菊属植物研究现状 | 第10-12页 |
| 1.1.1 植物种类 | 第10-11页 |
| 1.1.2 资源分布 | 第11页 |
| 1.1.3 化学成分及药理作用 | 第11-12页 |
| 1.1.3.1 倍半萜内酯类物质 | 第11页 |
| 1.1.3.2 甾醇类物质 | 第11页 |
| 1.1.3.3 黄酮类物质 | 第11-12页 |
| 1.1.3.4 酚酸类物质 | 第12页 |
| 1.2 菊苣酸的研究进展 | 第12-19页 |
| 1.2.1 菊苣酸的鉴定与检测 | 第13-15页 |
| 1.2.1.1 高效液相色谱法(HPLC) | 第13-14页 |
| 1.2.1.2 液质联用法(LC-MS) | 第14页 |
| 1.2.1.3 薄层色谱法(TLC) | 第14-15页 |
| 1.2.1.4 胶束电动毛细管色谱法(MEKC) | 第15页 |
| 1.2.1.5 毛细管电泳法(CE) | 第15页 |
| 1.2.2 菊苣酸的提取与纯化 | 第15-17页 |
| 1.2.2.1 菊苣酸的提取 | 第15-16页 |
| 1.2.2.2 菊苣酸的纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.3 生物活性 | 第17-18页 |
| 1.2.3.1 抗氧化和清除自由基能力 | 第17页 |
| 1.2.3.2 抗病毒 | 第17页 |
| 1.2.3.3 提高免疫力 | 第17-18页 |
| 1.2.3.4 抗癌 | 第18页 |
| 1.2.3.5 胰岛素分泌的促进剂 | 第18页 |
| 1.2.3.6 其他生物活性 | 第18页 |
| 1.2.4 微生物转化 | 第18-19页 |
| 1.3 课题研究的意义、内容与技术路线 | 第19-22页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第19-20页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.3.3 技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 多裂翅果菊中菊苣酸的鉴定与提取优化 | 第22-41页 |
| 2.1 多裂翅果菊中菊苣酸的鉴定 | 第22-33页 |
| 2.1.1 材料与设备 | 第22-23页 |
| 2.1.1.1 材料与试剂 | 第22页 |
| 2.1.1.2 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.1.2.1 提取液制备 | 第23页 |
| 2.1.2.2 高效液相色谱条件 | 第23页 |
| 2.1.2.3 质谱条件 | 第23页 |
| 2.1.2.4 不同植物多酚类成分的提取 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验结果 | 第24-33页 |
| 2.1.3.1 菊苣酸的鉴定 | 第24-25页 |
| 2.1.3.2 其他多酚类物质的鉴定 | 第25-28页 |
| 2.1.3.3 提取液中的多酚类成分 | 第28-29页 |
| 2.1.3.4 不同植物多酚类成分的含量比较 | 第29-33页 |
| 2.2 多裂翅果菊中菊苣酸的提取条件优化 | 第33-39页 |
| 2.2.1 材料与设备 | 第33页 |
| 2.2.1.1 材料与试剂 | 第33页 |
| 2.2.1.2 仪器与设备 | 第33页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.2.2.1 标准品溶液的制备 | 第33页 |
| 2.2.2.2 标准曲线绘制 | 第33页 |
| 2.2.2.3 乙醇溶液浓度的选择 | 第33-34页 |
| 2.2.2.4 料液比的选择 | 第34页 |
| 2.2.2.5 提取时间的选择 | 第34页 |
| 2.2.2.6 提取温度的选择 | 第34页 |
| 2.2.2.7 提取次数的选择 | 第34页 |
| 2.2.2.8 正交试验设计 | 第34-35页 |
| 2.2.3 实验结果 | 第35-39页 |
| 2.2.3.1 乙醇溶液浓度的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.2 料液比的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.3.3 提取时间的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.3.4 提取温度的影响 | 第37页 |
| 2.2.3.5 提取次数的影响 | 第37-38页 |
| 2.2.3.6 正交试验结果 | 第38-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 多裂翅果菊中菊苣酸的分离纯化与抗氧化活性评价 | 第41-55页 |
| 3.1 多裂翅果菊中菊苣酸的分离纯化 | 第41-48页 |
| 3.1.1 材料与设备 | 第41-42页 |
| 3.1.1.1 材料与试剂 | 第41-42页 |
| 3.1.1.2 仪器与设备 | 第42页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 3.1.2.1 上样液的制备 | 第42页 |
| 3.1.2.2 树脂预处理 | 第42页 |
| 3.1.2.3 HPLC条件 | 第42-43页 |
| 3.1.2.4 静态吸附实验 | 第43页 |
| 3.1.2.5 静态解吸实验 | 第43页 |
| 3.1.2.6 静态吸附动力学实验 | 第43-44页 |
| 3.1.2.7 大孔树脂对菊苣酸的初步纯化 | 第44页 |
| 3.1.2.8 聚酰胺对菊苣酸的二次纯化 | 第44页 |
| 3.1.3 实验结果 | 第44-48页 |
| 3.1.3.1 树脂的静态吸附与解吸 | 第44-45页 |
| 3.1.3.2 静态吸附动力学曲线 | 第45页 |
| 3.1.3.3 利用ADC 201大孔树脂对菊苣酸的初步纯化 | 第45-47页 |
| 3.1.3.4 利用聚酰胺对菊苣酸的二次纯化 | 第47-48页 |
| 3.2 多裂翅果菊中菊苣酸的抗氧化活性评价 | 第48-52页 |
| 3.2.1 材料与设备 | 第48-49页 |
| 3.2.1.1 材料与试剂 | 第48页 |
| 3.2.1.2 仪器与设备 | 第48-49页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第49-50页 |
| 3.2.2.1 清除DPPH·自由基的测定 | 第49页 |
| 3.2.2.2 清除·OH自由基的测定 | 第49页 |
| 3.2.2.3 清除O~(2-)自由基的测定 | 第49-50页 |
| 3.2.2.4 数据分析 | 第50页 |
| 3.2.3 实验结果 | 第50-52页 |
| 3.2.3.1 DPPH·自由基的清除活性 | 第50-51页 |
| 3.2.3.2 ·OH自由基的清除活性 | 第51-52页 |
| 3.2.3.3 O~(2-)自由基的清除活性 | 第52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 多裂翅果菊的菊苣酸提取液的微生物转化 | 第55-66页 |
| 4.1 材料与设备 | 第55-56页 |
| 4.1.1 菌株 | 第55页 |
| 4.1.2 培养基 | 第55-56页 |
| 4.1.3 仪器与设备 | 第56页 |
| 4.1.4 材料与试剂 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-57页 |
| 4.2.1 菊苣酸提取液的制备 | 第56页 |
| 4.2.2 酶液的制备及转化 | 第56页 |
| 4.2.3 Y_2细菌微生物转化 | 第56-57页 |
| 4.2.4 液质联用分析 | 第57页 |
| 4.3 实验结果 | 第57-64页 |
| 4.3.1 微生物对菊苣酸提取液的转化 | 第57-62页 |
| 4.3.2 LC-MS对转化产物的鉴定 | 第62-63页 |
| 4.3.2.1 黑根霉转化产物鉴定及分析 | 第62页 |
| 4.3.3.2 Y_2细菌转化产物鉴定及分析 | 第62-63页 |
| 4.3.3 黑根霉的转化时间曲线 | 第63-64页 |
| 4.4 讨论 | 第64-65页 |
| 4.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第五章 结论与展望 | 第66-68页 |
| 5.1 结论 | 第66-67页 |
| 5.2 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-83页 |
| 在校期间发表的论文及申请的专利 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |