中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略词表 | 第10-13页 |
第一章 前言 | 第13-15页 |
第二章 文献综述 | 第15-30页 |
2.1 认知障碍与听力损失的研究现状与联系 | 第15-17页 |
2.1.1 认知障碍的研究现状 | 第15-16页 |
2.1.2 听力损失的研究现状 | 第16页 |
2.1.3 认知障碍与听力损失的联系 | 第16-17页 |
2.2 听觉脑区与大脑皮层边缘系统的解剖学与功能学联系 | 第17-19页 |
2.3 学习记忆与海马神经新生、海马学习记忆相关即刻早基因 | 第19-24页 |
2.3.1 海马在学习记忆过程中的重要作用 | 第19-20页 |
2.3.2 海马神经新生是学习记忆的基础 | 第20-21页 |
2.3.3 海马学习记忆相关即刻早基因 | 第21-24页 |
2.4 Morris水迷宫认知训练 | 第24-26页 |
2.4.1 Morris水迷宫认知训练对空间学习记忆的检测 | 第24-25页 |
2.4.2 Morris水迷宫认知训练对空间学习记忆相关即刻早基因表达的影响 | 第25-26页 |
2.5 噪声性听力损失对海马相关认知功能的影响 | 第26-30页 |
2.5.1 噪声性听力损失与认知障碍 | 第26-29页 |
2.5.2 噪声性听力损失对海马空间学习记忆相关即刻早基因表达的影响 | 第29-30页 |
第三章 材料与方法 | 第30-39页 |
3.1 主要试剂与仪器 | 第30-32页 |
3.1.1 主要试剂 | 第30-31页 |
3.1.2 主要仪器 | 第31页 |
3.1.3 相关试剂配制 | 第31-32页 |
3.2 实验设计分组与技术路线 | 第32-33页 |
3.3 主要实验方法 | 第33-38页 |
3.3.1 噪声暴露 | 第33-34页 |
3.3.2 听觉功能测试 | 第34页 |
3.3.3 Morris水迷宫认知训练 | 第34-35页 |
3.3.4 即刻早基因核酸及蛋白水平表达的检测 | 第35-38页 |
3.3.4.1 总RNA的提取 | 第35-36页 |
3.3.4.2 总蛋白的提取 | 第36页 |
3.3.4.3 RNA质量及蛋白浓度的测定 | 第36-37页 |
3.3.4.4 RNA逆转录及RT-qPCR检测 | 第37-38页 |
3.3.4.5 蛋白Westernblot检测 | 第38页 |
3.4 统计学处理 | 第38-39页 |
第四章 结果 | 第39-43页 |
4.1 噪声暴露致小鼠听力阈值变化 | 第39页 |
4.2 噪声性听力损失对小鼠在Morris水迷宫中空间学习记忆的影响 | 第39-41页 |
4.3 噪声性听力损失对Morris水迷宫诱导的即刻早基因核酸和蛋白表达的影响 | 第41-43页 |
4.3.1 噪声性听力损失对即刻早基因核酸水平表达的影响 | 第41-42页 |
4.3.2 噪声性听力损失对即刻早基因蛋白水平表达的影响 | 第42-43页 |
第五章 讨论 | 第43-50页 |
5.1 本研究的主要发现 | 第43页 |
5.2 噪声性听力损失动物模型的建立 | 第43页 |
5.3 Morris水迷宫认知训练方式的合理性和局限性 | 第43-46页 |
5.4 噪声性听力损失和Morris水迷宫训练对即刻早基因表达影响的探讨 | 第46-49页 |
5.5 本研究的局限及未来发展方向 | 第49-50页 |
第六章 结论 | 第50-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-58页 |
作者简介 | 第58页 |