| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-17页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-17页 |
| 一、ATV预处理对BMSCsCXCR4基因表达的影响 | 第17-39页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-26页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第17页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第17页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第18-26页 |
| 1.2 结果 | 第26-33页 |
| 1.2.1 BMSCs形态学观察 | 第26页 |
| 1.2.2 BMSCs免疫表型的检测 | 第26-27页 |
| 1.2.3 ATV处理MSCs的免疫荧光实验 | 第27-28页 |
| 1.2.4 不同浓度ATV处理MSCs后MTS检测细胞增殖 | 第28-29页 |
| 1.2.5 ATV处理MSCs后Transwell检测细胞迁移 | 第29-30页 |
| 1.2.6 ATV处理MSCs细胞凋亡实验 | 第30-31页 |
| 1.2.7 q-PCR实验检测ATV处理BMSCs细胞CXCR4表达 | 第31-33页 |
| 1.2.8 ATV处理BMSCs后WB测CXCR4的蛋白表达 | 第33页 |
| 1.3 讨论 | 第33-38页 |
| 1.3.1 DM的发病机制及现有治疗方法 | 第33-34页 |
| 1.3.2 干细胞治疗DR的巨大潜能 | 第34-36页 |
| 1.3.3 SDF-1/CXCR4信号通路在MSC归巢定植作用 | 第36-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-39页 |
| 二、ATV-BMSCs对DM大鼠视网膜病变的影响 | 第39-61页 |
| 2.1 对象和方法 | 第39-42页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第39页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第39页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第39页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第39-42页 |
| 2.2 | 第42-54页 |
| 2.2.2 DM大鼠模型的建立 | 第42-43页 |
| 2.2.3 正常大鼠与DM大鼠血糖与体重 | 第43页 |
| 2.2.4 HE染色观察视网膜结构 | 第43-47页 |
| 2.2.5 WB检测DM大鼠Rhodopsin/NSE及炎症因子IL-6/TNF-α蛋白表达 | 第47-50页 |
| 2.2.6 免疫组化检测DM大鼠Rhodopsin/NSE及炎症因子IL-6/TNF-α蛋白表达 | 第50-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-59页 |
| 2.3.1 ATV促进MSC的迁移和归巢 | 第54-55页 |
| 2.3.2 视紫红质（Rhodopsin)蛋白、NSE蛋白、TNF-a蛋白、IL-6蛋白在DR中的意义 | 第55-58页 |
| 2.3.3 MSCs在临床应用的安全性 | 第58-59页 |
| 2.4 小结 | 第59-61页 |
| 全文结论 | 第61-62页 |
| 论文创新点 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-80页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第80-81页 |
| 综述 间充质干细胞联合他汀类药物在糖尿病视网膜病变中的应用研究进展 | 第81-90页 |
| 综述参考文献 | 第84-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 个人简历 | 第91页 |
