| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1 多胺的合成途径 | 第9-10页 |
| 2 多胺在植物中的抗高温机制 | 第10-13页 |
| 2.1 多胺在植物中的抗高温生理机制 | 第10-12页 |
| 2.1.1 多胺通过维持膜稳定提高植物耐热性 | 第10页 |
| 2.1.2 多胺通过维持光合作用稳定提高植物耐热性 | 第10-11页 |
| 2.1.3 多胺通过参与蒸腾作用调控提高植物耐热性 | 第11页 |
| 2.1.4 高温胁迫下多胺对乙烯合成抑制的作用机制 | 第11-12页 |
| 2.2 多胺在植物抗高温中的分子机制 | 第12-13页 |
| 2.2.1 高温胁迫下多胺对DNA合成的作用机制 | 第12页 |
| 2.2.2 高温胁迫下多胺对蛋白质修饰的作用机制 | 第12-13页 |
| 3 多胺的转运 | 第13-14页 |
| 4 多胺转运蛋白 | 第14-15页 |
| 4.1 多胺转运蛋白在拟南芥中的研究 | 第14-15页 |
| 4.2 多胺转运蛋白在水稻中的研究 | 第15页 |
| 5 研究目的和意义 | 第15-16页 |
| 第二章 水稻OsLHR1基因的克隆及生物信息分析 | 第16-35页 |
| 1 材料与方法 | 第16-27页 |
| 1.1 材料 | 第16页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第16页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第16页 |
| 1.2 方法 | 第16-27页 |
| 1.2.1 水稻OsLHR1基因的克隆 | 第16-26页 |
| 1.2.2 水稻OsLHR1基因的生物信息学分析 | 第26-27页 |
| 2 结果 | 第27-34页 |
| 2.1 获取水稻的cDNA | 第27页 |
| 2.2 水稻OsLHR1基因扩增片段 | 第27-28页 |
| 2.3 PCR产物的测序比对 | 第28-31页 |
| 2.4 序列分析 | 第31-32页 |
| 2.5 OsLHR1基因的进化树分析 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-35页 |
| 第三章 荧光载体p35S::OsLHR1-GFP的构建及转化 | 第35-47页 |
| 1 材料与方法 | 第35-42页 |
| 1.1 材料 | 第35页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第35页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第35页 |
| 1.1.3 仪器设备 | 第35页 |
| 1.2 方法 | 第35-42页 |
| 1.2.1 基本试剂及培养基配置 | 第35-36页 |
| 1.2.2 构建荧光载体p35S::OsLHR1-GFP | 第36-39页 |
| 1.2.3 根癌农杆菌GV3101介导法转化洋葱内表皮细胞 | 第39-40页 |
| 1.2.4 过表达载体p35S-OsLHR1的构建 | 第40页 |
| 1.2.5 拟南芥的遗传转化 | 第40-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-46页 |
| 2.1 重组质粒菌落PCR及双酶切验证 | 第42-43页 |
| 2.2 OsLHR1基因亚细胞定位 | 第43-44页 |
| 2.3 p35S::OsLHR1转基因植株纯合子的获得 | 第44-46页 |
| 2.3.1 转基因p35S::OsLHR1抗性苗的筛选 | 第44-45页 |
| 2.3.2 p35S::OsLHR1抗性苗的PCR检测 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 第四章 拟南芥lhr1的表型恢复 | 第47-51页 |
| 1 材料与方法 | 第47-48页 |
| 1.1 材料 | 第47页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第47页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第47页 |
| 1.1.3 仪器设备 | 第47页 |
| 1.2 方法 | 第47-48页 |
| 1.2.1 基本试剂及培养基配置 | 第47-48页 |
| 1.2.2 不同浓度百草枯对拟南芥种子生长情况的影响 | 第48页 |
| 1.2.3 百草枯胁迫下的拟南芥根长测定 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-50页 |
| 2.1 不同浓度百草枯对拟南芥种子萌发情况的影响 | 第48-49页 |
| 2.2 百草枯胁迫下的拟南芥根长生长情况 | 第49-50页 |
| 3 讨论 | 第50-51页 |
| 第五章 全文总结与创新点 | 第51-52页 |
| 1 总结 | 第51-52页 |
| 2 创新点 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 附录 1 | 第59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |
