| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词表 | 第14-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-18页 |
| 第2章 文献综述 | 第18-26页 |
| 2.1 骨的作用及形成原理 | 第19-21页 |
| 2.1.1 骨骼的作用 | 第19页 |
| 2.1.2 牙槽骨的作用与特性 | 第19页 |
| 2.1.3 骨形成的主要依赖细胞 | 第19-20页 |
| 2.1.4 骨的形成过程 | 第20-21页 |
| 2.2 miRNA的简述及在成骨方面作用的研究进展 | 第21-24页 |
| 2.2.1 miRNA概述 | 第21页 |
| 2.2.2 miRNA对成骨细胞的调控 | 第21-24页 |
| 2.3 miRNA转运系统 | 第24-26页 |
| 第3章 实验研究 | 第26-35页 |
| 3.1 实验试剂与仪器 | 第26-28页 |
| 3.1.1 主要试剂和材料 | 第26-27页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第27页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第27-28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-35页 |
| 3.2.1 大鼠骨髓间充质干细胞的分离与培养 | 第28-29页 |
| 3.2.2 细胞铺板培养、转染 | 第29-30页 |
| 3.2.3 流式细胞术检查N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物的转染情况 | 第30页 |
| 3.2.4 甲基噻唑四唑法(methylthiazolyltetrazolium,MTT)检测N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对BMSCs增殖影响 | 第30-31页 |
| 3.2.5 碱性磷酸酶试剂盒测定N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物刺激BMSCs后胞内ALP活力值 | 第31页 |
| 3.2.6 细胞总RNA提取、总cDNA合成 | 第31-33页 |
| 3.2.7 cDNA进行扩增 | 第33页 |
| 3.2.8 定量聚合酶链反应(realtime-quantitativepolymerase chain reaction,Realtime-PCR)检测BMSCs细胞内成骨标志性基因的mRNA的表达 | 第33-34页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第34-35页 |
| 第4章 实验结果 | 第35-39页 |
| 4.1 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a在BMSCs细胞内的转染效率与复合物一定范围内的质量比呈正相关 | 第35-36页 |
| 4.2 不同质量比N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对BMSCs增殖影响具有一定差异性 | 第36-37页 |
| 4.3 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进BMSCs细胞内碱性磷酸酶表达 | 第37页 |
| 4.4 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进BMSCs向成骨细胞分化 | 第37-39页 |
| 第5章 讨论 | 第39-44页 |
| 5.1 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物转染效率 | 第40-41页 |
| 5.2 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物抑制细胞增殖 | 第41页 |
| 5.3 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进BMSCs细胞成骨分化 | 第41-44页 |
| 第6章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-54页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
