| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第13-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-22页 |
| 1.1 T1D与CD4~+T细胞 | 第15-16页 |
| 1.2 BMSCS与CD4~+T细胞免疫调节 | 第16-19页 |
| 1.3 PD-L1/PD-1与CD4~+T细胞的免疫调节 | 第19-22页 |
| 第2章 材料方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-32页 |
| 2.2.1 T1D小鼠模型构建 | 第23-24页 |
| 2.2.2 胰腺组织的HE染色 | 第24页 |
| 2.2.3 BMSCs原代提取与培养 | 第24-25页 |
| 2.2.4 小鼠脾细胞原代提取与培养 | 第25页 |
| 2.2.5 BMSCs与脾细胞共培养 | 第25页 |
| 2.2.6 脾细胞收集与流式细胞术检测Th1细胞比例 | 第25-26页 |
| 2.2.7 脾细胞收集与流式细胞术检测Tregs细胞比例 | 第26-27页 |
| 2.2.8 BMSCs与脾细胞的RNA提取以及RT-qPCR | 第27-29页 |
| 2.2.9 BMSCs与脾细胞的蛋白提取与Western Blot | 第29-31页 |
| 2.2.10 PD-L1阻断抗体阻断PD-L1通路与流式细胞术检测 | 第31页 |
| 2.2.11 统计学处理 | 第31-32页 |
| 第3章 实验结果 | 第32-46页 |
| 3.1 T1D小鼠模型的构建 | 第32-33页 |
| 3.1.1 小鼠血糖和体重的测量 | 第32页 |
| 3.1.2 小鼠胰腺组织的HE染色 | 第32-33页 |
| 3.2 正常脾细胞的CD4~+T、Th1细胞比例比T1D脾细胞低，Tregs细胞比例比T1D脾细胞高 | 第33-36页 |
| 3.2.1 正常脾细胞的CD4~+T细胞比例比T1D低 | 第33-34页 |
| 3.2.2 正常脾细胞的Th1细胞比T1D低，Tregs细胞比T1D高20 | 第34-36页 |
| 3.3 BMSCS能够下调T1D脾细胞中CD4~+T、Th1细胞比例，上调Tregs细胞比例 | 第36-40页 |
| 3.3.1 BMSCs能够下调T1D脾细胞CD4~+T细胞的比例 | 第36-37页 |
| 3.3.2 BMSCs能够下调T1D脾细胞Th1细胞的比例，上调Tregs细胞的比例 | 第37-40页 |
| 3.4 T1D脾细胞与BMSCS共培养可以上调BMSCS的PD-L1和脾细胞PD-1的表达水平 | 第40-43页 |
| 3.4.1 T1D脾细胞与BMSCs共培养可以上调BMSCs的PD-L1和脾细胞PD-1在RNA水平的表达 | 第40-41页 |
| 3.4.2 T1D脾细胞与BMSCs共培养可以上调BMSCs的PD-L1和脾细胞PD-1在蛋白质水平的表达 | 第41-43页 |
| 3.5 PD-L1/PD-1通路在BMSCS下调T1D脾细胞中Th1细胞比例， 上调Tregs细胞比例中起重要作用 | 第43-46页 |
| 第4章 讨论 | 第46-51页 |
| 4.1 BMSCS通过与T1D脾细胞直接接触下调Th1细胞比例、上调Tregs细胞比例 | 第46-47页 |
| 4.2 PD-L1/PD-1通路在BMSCS下调T1D脾细胞Th1细胞的比例， 上调Tregs细胞的比例中起重要作用 | 第47-51页 |
| 第5章 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
