| 摘要 | 第2-3页 |
| abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-10页 |
| 材料与方法 | 第10-21页 |
| 1 细胞株 | 第10页 |
| 2 主要试剂和材料 | 第10-11页 |
| 3 主要仪器设备 | 第11-12页 |
| 4 实验方法 | 第12-21页 |
| 4.1 细胞培养和传代 | 第12页 |
| 4.2 细胞复苏与冻存 | 第12-13页 |
| 4.3 慢病毒感染 | 第13页 |
| 4.4 Transwell实验 | 第13页 |
| 4.5 划痕实验 | 第13-14页 |
| 4.6 总蛋白提取 | 第14页 |
| 4.7 免疫印迹法 | 第14-15页 |
| 4.8 总RNA提取 | 第15页 |
| 4.9 荧光定量 PCR | 第15-17页 |
| 4.10 荧光素酶报告系统载体构建 | 第17-20页 |
| 4.11 免疫组化 | 第20页 |
| 4.12 统计学分析 | 第20-21页 |
| 结果 | 第21-35页 |
| 1 MEF2D参与TGF-β诱导细胞发生EMT过程 | 第21-24页 |
| 1.1 MEF2D随着TGF-β浓度变化成剂量依赖性增加 | 第21-22页 |
| 1.2 MEF2D随着TGF-β作用时间表达量增加 | 第22-23页 |
| 1.3 MEF2D在发生EMT过程中发挥重要作用 | 第23-24页 |
| 2.MEF2D可以明显促进细胞发生侵袭转移 | 第24-28页 |
| 2.1 过表达MEF2D促进细胞的侵袭转移 | 第24-26页 |
| 2.2 干扰MEF2D的表达细胞侵袭能力下降 | 第26-28页 |
| 3.MEF2D促进侵袭转移的机制研究 | 第28-32页 |
| 3.1 MEF2D与Twist1的表达量成正相关 | 第28-31页 |
| 3.2 MEF2D通过结合Twist1的启动子区域促进其表达 | 第31-32页 |
| 4.MEF2D在肝癌组织中的表达情况 | 第32-35页 |
| 4.1 MEF2D在肝癌组织中表达量明显增加 | 第32-33页 |
| 4.2 MEF2D在转移灶与原发灶之间表达量的差异 | 第33-35页 |
| 讨论 | 第35-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 综述 | 第42-53页 |
| 综述参考文献 | 第48-53页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第53-54页 |
| 缩略词表 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
