| 中文摘要 | 第6-11页 |
| Abstract | 第11-16页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第17-18页 |
| 前言 | 第18-23页 |
| 1 材料与方法 | 第23-46页 |
| 第一部分 人群研究 | 第23-30页 |
| 1.1 研究对象 | 第23页 |
| 1.2 资料和标本收集 | 第23-24页 |
| 1.3 所需仪器及试剂 | 第24-27页 |
| 1.4 检测方法 | 第27-30页 |
| 第二部分 体外实验研究 | 第30-41页 |
| 1.5 实验细胞 | 第30页 |
| 1.6 实验材料 | 第30-32页 |
| 1.7 实验方法 | 第32-41页 |
| 第三部分 生物信息学分析 | 第41-46页 |
| 1.8 基因数据库的来源 | 第41-42页 |
| 1.9 生物学通路富集分析 | 第42-43页 |
| 1.10 质量控制 | 第43-44页 |
| 1.11 数据录入与统计分析 | 第44-46页 |
| 2 结果 | 第46-78页 |
| 第一部分 人群研究 | 第46-56页 |
| 2.1 人群研究对象一般人口学特征及宫颈癌相关因素 | 第46-49页 |
| 2.2 不同宫颈病变组HPVs和HPV16感染情况 | 第49页 |
| 2.3 不同宫颈病变组HPV16基因E2和E6表达水平 | 第49-51页 |
| 2.4 不同宫颈病变组中HPV16E2/E6蛋白比值 | 第51-52页 |
| 2.5 不同宫颈病变组hnRNPK蛋白表达 | 第52-54页 |
| 2.6 hnRNPK蛋白表达与HPV16感染的交互作用分析 | 第54-56页 |
| 2.7 hnRNPK与HPV16基因E2/E6蛋白表达的关系 | 第56页 |
| 第二部分 体外细胞实验 | 第56-73页 |
| 2.8 质粒转染最适浓度及最佳时间选择 | 第57页 |
| 2.9 hnRNPK基因沉默和过表达的效果 | 第57-60页 |
| 2.10 hnRNPK对细胞活性的影响 | 第60-62页 |
| 2.11 hnRNPK对细胞周期的影响 | 第62-64页 |
| 2.12 hnRNPK对细胞凋亡的影响 | 第64-66页 |
| 2.13 hnRNPK对HPV16 E2和E6表达的影响 | 第66-68页 |
| 2.14 hnRNPK与HPV16基因调控元件的结合位点分析 | 第68-69页 |
| 2.15 hnRNPK与人类基因组结合位点分析 | 第69-71页 |
| 2.16 hnRNPK对c-Myc表达的影响 | 第71-73页 |
| 第三部分 生物信息学分析 | 第73-78页 |
| 2.17 不同宫颈病变组hnRNPK mRNA表达 | 第73-76页 |
| 2.18 hnRNP K在宫颈癌中参与的生物学功能预测 | 第76-77页 |
| 2.19 基于宫颈癌TCGA数据库的hnRNPK与c-Myc相关性分析 | 第77-78页 |
| 3 讨论 | 第78-87页 |
| 3.1 宫颈癌变相关因素与宫颈癌变的关系 | 第78-80页 |
| 3.2 HPV16基因E2、E6与宫颈癌变的关系 | 第80-81页 |
| 3.3 hnRNPK与宫颈癌变的关系 | 第81-83页 |
| 3.4 hnRNPK对HPV16基因E2、E6表达的调控及其机制 | 第83-85页 |
| 3.5 hnRNPK对c-Myc基因表达的调控及其机制 | 第85-87页 |
| 全文总结 | 第87-88页 |
| 创新点与不足之处 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-98页 |
| 综述 | 第98-120页 |
| 参考文献 | 第107-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 在学期间承担/参加的科研课题与研究成果 | 第121-123页 |
| 个人简历 | 第123页 |
