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雷公藤红素对大鼠肥胖的治疗作用及机制研究

中文摘要第6-11页
英文摘要第11-16页
前言第17-21页
材料和方法第21-39页
    1 实验材料第21-25页
        1.1 实验动物第21页
        1.2 实验试剂及配制方法第21-24页
        1.3 主要实验仪器第24-25页
    2 实验方法第25-39页
        2.1 高脂饮食诱导肥胖大鼠模型第25页
        2.2 雷公藤红素急性毒性试验第25-26页
        2.3 雷公藤红素给药实验第26页
        2.4 血生化第26-27页
        2.5 病理切片制片和H&E染色第27页
        2.6 口服葡萄糖耐量和胰岛素耐量实验第27-28页
        2.7 肠道菌群鉴定第28页
        2.8 抗生素干扰实验第28-29页
        2.9 Leptin~(+/-)、Leptin~(-/-)基因型大鼠繁殖、鉴定和雷公藤红素给药实验第29-31页
        2.10 RNA提取、RNA-Seq测序和RT-qPCR第31-33页
        2.11 蛋白提取和蛋白表达水平检测第33-35页
        2.12 TSE代谢笼监测第35-36页
        2.13 测序数据分析第36-38页
        2.14 统计分析第38-39页
结果第39-78页
    1 雷公藤红素安全剂量范围第39-40页
    2 高脂饮食诱导肥胖模型第40页
    3 雷公藤红素治疗肥胖的有效剂量和安全给药方式第40-43页
        3.1 有效剂量第40-41页
        3.2 安全给药方式第41-43页
    4 雷公藤红素的肥胖治疗作用第43-48页
        4.1 雷公藤红素处理流程第43-44页
        4.2 雷公藤红素处理后大鼠体重减轻第44页
        4.3 雷公藤红素处理后大鼠脂肪和肝脏组织病理第44-45页
        4.4 雷公藤红素处理后大鼠血生化指标无显著差异第45-46页
        4.5 雷公藤红素处理前后大鼠口服葡萄糖耐量水平无显著差异第46-47页
        4.6 雷公藤红素处理后大鼠胰岛素敏感性改善第47-48页
    5 肠道菌群在雷公藤红素治疗肥胖过程中的作用第48-58页
        5.1 雷公藤红素处理后大鼠肠道菌群16srRNA测序第48-50页
        5.2 雷公藤红素处理后大鼠肠道菌群β多样性第50-51页
        5.3 雷公藤红素后大鼠肠道菌群α多样性增加第51-52页
        5.4 雷公藤红素处理后大鼠肠道各菌门相对丰度第52-54页
        5.5 硬壁菌门和拟杆菌门相对丰度随处理时间变化情况第54-55页
        5.6 肠道菌群能够影响雷公藤红素减轻体重效果第55-58页
    6 雷公藤红素处理对下丘脑能量调节中枢的影响第58-62页
        6.1 下丘脑转录组测序第58-60页
        6.2 雷公藤红素处理后大鼠下丘脑差异表达基因第60-61页
        6.3 雷公藤红素处理后大鼠下丘脑差异基因富集通路第61-62页
    7 瘦素通路在雷公藤红素减轻体重效应中的作用第62-69页
        7.1 瘦素通路基因表达水平第62-64页
        7.2 血清瘦素水平第64-65页
        7.3 瘦素通路关键因子蛋白表达水平第65-66页
        7.4 瘦素基因敲除大鼠模型构建第66-67页
        7.5 雷公藤红素处理杂合型瘦素敲除大鼠第67-68页
        7.6 雷公藤红素处理纯合型瘦素敲除大鼠第68-69页
    8 瘦素在介导雷公藤红素调节能量平衡中的作用第69-78页
        8.1 雷公藤红素对摄食的影响第69-71页
        8.2 雷公藤红素对能量代谢的影响第71-73页
        8.3 雷公藤红素对脂肪组织能量代谢相关基因表达的影响第73-75页
        8.4 瘦素在雷公藤红素提高能量消耗过程中的作用第75-78页
讨论第78-83页
结论第83-84页
参考文献第84-93页
文献综述第93-124页
    参考文献第108-124页
附录第124-125页
在校期间发表文章情况第125-127页
致谢第127页

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