| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 水稻化感作用的研究进展 | 第10-14页 |
| 1.1.1 水稻化感作用 | 第10-11页 |
| 1.1.2 水稻化感作用资源筛选 | 第11-12页 |
| 1.1.3 水稻化感物质的种类 | 第12-13页 |
| 1.1.4 水稻化感作用机理研究 | 第13-14页 |
| 1.2 茉莉酸类物质的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 茉莉酸类物质的合成 | 第14页 |
| 1.2.2 茉莉酸类物质的生物功能 | 第14-16页 |
| 1.2.3 植物体内茉莉酸类物质的检测 | 第16页 |
| 1.3 茉莉酸的调控作用 | 第16-19页 |
| 1.3.1 茉莉酸对水稻生长发育的影响 | 第17页 |
| 1.3.2 茉莉酸对植物化感作用的影响 | 第17-19页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-29页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 表达载体及菌株 | 第20页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第20页 |
| 2.1.4 相关引物 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-29页 |
| 2.2.1 材料的种植 | 第21页 |
| 2.2.2 水稻根部总RNA的提取以及cDNA逆转录 | 第21页 |
| 2.2.3 AOC基因过量表达载体的构建 | 第21页 |
| 2.2.4 AOC基因RNAi干扰载体的构建 | 第21-22页 |
| 2.2.5 AOC基因沉默及过量表达转基因水稻的获取 | 第22页 |
| 2.2.6 阳性转基因水稻的筛选 | 第22-26页 |
| 2.2.7 转基因水稻酚酸相关基因的表达变化 | 第26页 |
| 2.2.8 检测转基因水稻中萜类合成关键酶基因含量 | 第26-27页 |
| 2.2.9 转基因水稻酚酸含量的检测 | 第27页 |
| 2.2.10 转基因水稻萜类物质相对含量的检测 | 第27-28页 |
| 2.2.11 琼脂迟播共培法检测转基因水稻化感潜力 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-42页 |
| 3.1 稗草胁迫下不同化感水稻AOC基因的表达变化 | 第29页 |
| 3.2 水稻AOC基因的克隆 | 第29-30页 |
| 3.3 不同化感水稻AOC基因序列的差异性比对 | 第30-31页 |
| 3.4 AOC过量表达载体以及RNAi干扰载体的酶切验证 | 第31页 |
| 3.5 转基因水稻GUS染色结果 | 第31-32页 |
| 3.6 Tail-PCR检测转基因水稻的插入位点 | 第32-33页 |
| 3.7 转基因水稻AOC基因以及茉莉酸含量的检测 | 第33-35页 |
| 3.8 酚酸相关基因表达变化以及酚酸含量变化 | 第35-37页 |
| 3.9 萜类相关基因表达变化以及萜类相对含量变化 | 第37-40页 |
| 3.10 琼脂迟播共培法检测抑草效率 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-45页 |
| 4.1 茉莉酸类小分子物质的生物学意义 | 第42页 |
| 4.2 水稻化感作用及其调控方式 | 第42-43页 |
| 4.3 茉莉酸与水稻化感作用之间的关系 | 第43-44页 |
| 4.4 AOC基因与水稻化感作用之间的关系 | 第44-45页 |
| 5 问题与展望 | 第45-46页 |
| 5.1 本研究不足之处 | 第45页 |
| 5.2 进一步实验的设想 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 附录1 水稻总RNA提取 | 第52页 |
| 附录2 逆转录(第一链cDNA的合成) | 第52-53页 |
| 附录3 EHA105根癌农杆菌感受态的制备及转化 | 第53-54页 |
| 附录4 水稻根部基因组DNA的提取 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
