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猪流行性腹泻病毒引起细胞周期阻滞的研究

摘要第3-4页
ABSTRACT第4页
第一章 绪论第9-36页
    1.1 PEDV 的流行病学特征第10页
    1.2 PEDV 的分类学特征第10-11页
    1.3 PEDV 分子生物学特性第11-13页
    1.4. PEDV 蛋白的特征第13-18页
        1.4.1 复制酶蛋白聚合体第13页
        1.4.2 ORF3 蛋白第13-14页
        1.4.3 纤突蛋白第14-16页
        1.4.4 膜糖蛋白第16页
        1.4.5 小膜蛋白第16-17页
        1.4.6 核衣壳蛋白第17-18页
    1.5 冠状病毒的增殖过程第18-23页
        1.5.1 病毒颗粒与受体结合与侵染第18-20页
        1.5.2 基因组的复制及病毒蛋白的合成第20-21页
        1.5.3 病毒颗粒的装配与释放第21-23页
    1.6 PEDV 的实验室诊断方法第23-26页
        1.6.1 免疫电镜法第23页
        1.6.2 免疫荧光法第23页
        1.6.3 ELISE 法第23-24页
        1.6.4 RT-PCR 法第24-25页
        1.6.5 RT-LAMP 法第25页
        1.6.6 免疫胶体金层析法第25-26页
        1.6.7 原位杂交技术第26页
    1.7 PEDV 疫苗研究进展第26-29页
        1.7.1 PEDV 灭活苗第26-27页
        1.7.2 PEDV 弱毒苗第27-28页
        1.7.3 转基因植物疫苗第28页
        1.7.4 乳酸杆菌疫苗第28-29页
        1.7.5 亚单位疫苗第29页
    1.8 病毒调控宿主细胞周期的研究进展第29-34页
        1.8.1 细胞周期及其调控分子第30-31页
        1.8.2 DNA 损伤信号通路第31-32页
        1.8.3 不同病毒对周期监测点的影响方式第32-33页
        1.8.4 冠状病毒调控细胞周期研究第33-34页
    1.9. 本实验研究的意义第34-36页
第二章 实验材料及方法第36-53页
    2.1 实验材料第36-37页
        2.1.1 细胞与病毒第36页
        2.1.2 抗体第36页
        2.1.3 实验试剂第36-37页
        2.1.4 实验仪器第37页
    2.2 实验方法第37-53页
        2.2.1 细胞及病毒的培养第37-38页
        2.2.2 引物及探针的合成第38页
        2.2.3 总 RNA 的提取第38-39页
        2.2.4 总 cDNA 的反转录第39页
        2.2.5 阳性质粒的制备第39-43页
        2.2.6 荧光定量 PCR 反应条件的建立及优化第43页
        2.2.7 标准曲线的建立第43-44页
        2.2.8 敏感性实验第44-45页
        2.2.9 特异性实验第45页
        2.2.10 重复性实验第45页
        2.2.11 临床样品检测第45页
        2.2.12 PEDV 株在 VERO 细胞中增殖曲线的测定第45-47页
        2.2.13 PEDV 感染对细胞周期的影响第47-51页
        2.2.14 DNA 损伤通路与 PEDV 的感染的关系第51-53页
第三章 实验结果第53-69页
    3.1 TAQ MAN-MGB 荧光定量 PCR 方法的建立与应用第53-58页
        3.1.1 阳性质粒的构建及反应条件的优化第53-54页
        3.1.2 标准曲线的建立第54-55页
        3.1.3 敏感性实验结果第55-56页
        3.1.4 特异性实验结果第56-57页
        3.1.5 重复性实验结果第57页
        3.1.6 临床样品检测第57-58页
    3.2 PEDV 在 VERO 细胞中的增殖曲线第58-61页
    3.3 PEDV 可引起 VERO 细胞产生 G1/G0 阻滞第61-65页
        3.3.1 流式细胞技术检测 VERO 细胞周期变化第61-64页
        3.3.2 Western Blot 检测主要周期蛋白的变化第64-65页
    3.4 细胞周期阻滞与 PEDV 增殖依赖于 DNA 损伤通路被激活第65-69页
        3.4.1 PEDV 的感染可激活 VERO 细胞的 DNA 损伤通路第65-66页
        3.4.2 抑制 DNA 损伤信号通可影响 PEDV 增殖及细胞周期阻滞第66-69页
第四章 讨论第69-74页
    4.1 TAQ MAN-MGB 荧光定量 PCR 方法的建立与应用第69-70页
    4.2 PEDV 增殖、VERO 细胞周期阻滞及 DNA 损伤通路关系的分析第70-74页
第五章 结论第74-75页
参考文献第75-82页
附录第82-83页
致谢第83-84页
本人攻读硕士期间发表的论文目录第84-86页

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