| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 中英文縮写 | 第9-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-20页 |
| 1 多糖特异性免疫识别分子机制的研究现状 | 第10-13页 |
| 1.1 植物多糖对巨噬细胞的影响 | 第10-11页 |
| 1.2 植物多糖对DC的影响 | 第11-12页 |
| 1.3 植物多糖受体 | 第12-13页 |
| 2 DC概述 | 第13-15页 |
| 2.1 DC的发现 | 第13页 |
| 2.2 DC在免疫应答中的地位 | 第13页 |
| 2.3 DC的来源、分类和分布 | 第13-14页 |
| 2.4 DC的分化与成熟 | 第14页 |
| 2.5 成熟DC诱导初始型T细胞极化过程 | 第14-15页 |
| 3 TLRs概述 | 第15-17页 |
| 3.1 TLRs的基本结构及其信号通路 | 第15-16页 |
| 3.2 TLRs在免疫应答中的作用 | 第16-17页 |
| 4 锦灯笼的研究现状 | 第17-19页 |
| 4.1 锦灯笼的生物学特征和化学成分 | 第17页 |
| 4.2 锦灯笼的药理学研究概况 | 第17-19页 |
| 5 本研究目的意义 | 第19-20页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第20-27页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第20-21页 |
| 1.1 实验材料 | 第20页 |
| 1.2 实验试剂 | 第20页 |
| 1.3 实验仪器 | 第20-21页 |
| 1.4 实验动物 | 第21页 |
| 2 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.1 BMDC的体外诱导培养及鉴定 | 第21-24页 |
| 2.2 流式细胞仪检测PPSB对BMDC表型的影响 | 第24-25页 |
| 2.3 流式细胞仪检测PPSB与BMDC特异性结合情况 | 第25-26页 |
| 2.4 统计分析 | 第26-27页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第27-37页 |
| 1 BMDC的鉴定 | 第27-30页 |
| 1.1 倒置显微镜下对细胞进行形态学观察 | 第27-28页 |
| 1.2 细胞表面分子表达水平的检测与分析 | 第28-30页 |
| 2 PPSB对BMDC表型成熟的影响 | 第30-34页 |
| 2.1 PPSB能够促进BMDC表面共刺激分子CD80的表达 | 第31-33页 |
| 2.2 PPSB能够促进BMDC表面共刺激分子CD86的表达 | 第33-34页 |
| 3 PPSB与BMDC表面受体TLR4特异性结合情况分析 | 第34-37页 |
| 第四章 讨论 | 第37-40页 |
| 1 体外扩增培养法可以获得大量较高比率的BMDC | 第37-38页 |
| 2 PPSB促进BMDC表面CD80、CD86的表达 | 第38-39页 |
| 3 PPSB能够抑制LPS与BMDC的结合 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 致谢 | 第44页 |
