| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 1 引言 | 第14-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1.1 主要仪器与设备 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.4 柠檬酸缓冲液的配制 | 第17页 |
| 2.1.5 磷酸盐缓冲液（phosphate buffered saline,PBS）的配制 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-21页 |
| 2.2.1 大鼠骨髓 EPCs 的分离与培养 | 第18页 |
| 2.2.2 大鼠骨髓 EPCs 的鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2.3 DPN 模型大鼠的制备 | 第19页 |
| 2.2.4 实验分组 | 第19页 |
| 2.2.5 移植体外培养的 EPCs | 第19页 |
| 2.2.6 坐骨神经 MNCV 的测定 | 第19-20页 |
| 2.2.7 坐骨神经病理学标本的制备 | 第20-21页 |
| 2.2.8 免疫组织化学法测量坐骨神经中 NF-κB 的表达 | 第21页 |
| 2.2.9 免疫组织化学法测量坐骨神经中 MBP 的表达 | 第21页 |
| 2.3 统计学分析 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-30页 |
| 3.1 大鼠骨髓 EPCS 的分离与培养 | 第22页 |
| 3.2 大鼠骨髓 EPCS 的鉴定 | 第22-23页 |
| 3.2.1 双荧光染色法鉴定 EPCs | 第22-23页 |
| 3.2.2 matrigel 凝胶成血管实验鉴定 EPCs | 第23页 |
| 3.3 DPN 模型大鼠 | 第23-24页 |
| 3.4 各组大鼠的一般情况 | 第24页 |
| 3.5 坐骨神经 MNCV | 第24页 |
| 3.6 坐骨神经的病理学改变 | 第24-26页 |
| 3.6.1 光学显微镜下观察大鼠坐骨神经的病理学改变 | 第24-25页 |
| 3.6.2 透射电子显微镜下观察大鼠坐骨神经的超微结构改变 | 第25-26页 |
| 3.7 各组大鼠坐骨神经中 NF-ΚB 的表达情况 | 第26-27页 |
| 3.8 各组大鼠坐骨神经中 MBP 的表达情况 | 第27-30页 |
| 4 讨论 | 第30-34页 |
| 5 结论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-38页 |
| 文献综述 | 第38-56页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
