| 中文摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1. 植物线粒体基因研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1 植物线粒体基因组 | 第12-14页 |
| 1.2 植物线粒体基因表达与细胞核的关系 | 第14-17页 |
| 1.2.1 植物线粒体基因的转录 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物线粒体基因的转录后加工 | 第15-17页 |
| 1.3 植物线粒体的生物学功能 | 第17-18页 |
| 2. SPX类蛋白及玉米雌穗花性别分化的研究进展 | 第18-25页 |
| 2.1 植物中SPX类蛋白的分类 | 第19-20页 |
| 2.2 植物SPX类蛋白的功能 | 第20-23页 |
| 2.2.1 SPX蛋白的功能 | 第20-21页 |
| 2.2.2 SPX-EXS蛋白的功能 | 第21-22页 |
| 2.2.3 SPX-MFS蛋白的功能 | 第22页 |
| 2.2.4 SPX-RING蛋白的功能 | 第22-23页 |
| 2.3 玉米雌穗花的性别分化 | 第23-24页 |
| 2.4 赤霉素的作用机制 | 第24-25页 |
| 3. 研究目的与意义 | 第25-26页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第26-42页 |
| 1. 实验材料和试剂 | 第26-27页 |
| 1.1 植物材料 | 第26页 |
| 1.2 实验材料及试剂 | 第26-27页 |
| 2. 实验方法 | 第27-42页 |
| 2.1 植物的培养 | 第27-28页 |
| 2.1.1 植物的灭菌处理 | 第27-28页 |
| 2.1.2 植物的培养条件 | 第28页 |
| 2.2 植物基因组DNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.2.1 试剂配制 | 第28-29页 |
| 2.2.2 提取步骤 | 第29页 |
| 2.3 植物总RNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.4 RNA的反转录 | 第30页 |
| 2.5 PCR程序的设定 | 第30-31页 |
| 2.6 Real-time PCR | 第31-32页 |
| 2.7 遗传转化操作 | 第32-36页 |
| 2.7.1 抗生素及培养基的配制 | 第32-34页 |
| 2.7.2 转化操作 | 第34-35页 |
| 2.7.3 载体的构建 | 第35-36页 |
| 2.8 酵母双杂交实验 | 第36-37页 |
| 2.9 转基因拟南芥的构建 | 第37-38页 |
| 2.10 琼脂糖凝胶电泳及DNA片段的回收 | 第38-39页 |
| 2.11 质粒的提取 | 第39-40页 |
| 2.12 拟南芥高表达转基因株系的筛选 | 第40页 |
| 2.13 拟南芥的盐胁迫处理 | 第40-41页 |
| 2.14 拟南芥开花时间的统计 | 第41-42页 |
| 第三章 实验结果 | 第42-53页 |
| 1. 拟南芥线粒体基因在细胞核中的表达 | 第42-49页 |
| 1.1 拟南芥线粒体基因的克隆 | 第42页 |
| 1.2 信号肽序列的添加 | 第42-43页 |
| 1.3 拟南芥转基因株系的构建 | 第43-44页 |
| 1.4 转基因高表达株系的筛选 | 第44-45页 |
| 1.5 拟南芥Amad7与Atnad4的转基因株系与野生型无明显生长差异 | 第45-46页 |
| 1.6 盐胁迫处理的转基因株系与野生型之间无明显生长差异 | 第46-47页 |
| 1.7 T3代转基因纯合株系的基因表达量下降至与野生型一致 | 第47-49页 |
| 2. 玉米基因ZmSpx1的功能研究 | 第49-53页 |
| 2.1 Mu转座子插入突变体的鉴定 | 第49页 |
| 2.2 突变体中ZmSpx1存在错误剪接形式 | 第49-50页 |
| 2.3 错误剪接形式改变了ZmSPX1的蛋白结构 | 第50-52页 |
| 2.4 突变蛋白Zmspx1与DELLA蛋白d8无明显相互作用 | 第52-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 附件 | 第67页 |
