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叶酸受体介导的β-榄香烯主动靶向微乳给药系统的研究

中文摘要第14-16页
ABSTRACT第16-17页
英文名缩写表第18-20页
前言第20-34页
    参考文献第30-34页
第一章 β-榄香烯微乳制剂处方设计前基本性质的研究第34-42页
    1 仪器与试药第34页
    2 方法与结果第34-40页
        2.1 β-榄香烯体外分析方法的建立第34-38页
            2.1.1 紫外检测波长的选择第34-36页
            2.1.2 色谱分析条件的确定第36页
            2.1.3 专属性考察第36-37页
            2.1.4 标准曲线的绘制第37-38页
            2.1.5 精密度考察第38页
            2.1.6 方法率试验第38页
            2.1.7 β-榄香烯含量测定方法第38页
        2.2 β-榄香烯基本理化性质的研究第38-40页
            2.2.1 β-榄香烯溶液的稳定性第38-39页
            2.2.2 β-榄香烯表观溶解度的测定第39页
            2.2.3 油水分配系数的测定第39-40页
    3 讨论第40-41页
    4 本章小结第41页
    参考文献第41-42页
第二章 β-榄香烯微乳处方与工艺优化的研究第42-57页
    1 仪器与试药第42页
    2 方法与结果第42-53页
        2.1 微乳处方组成的初步筛选第42-43页
            2.1.1 油相的选择第43页
            2.1.2 表面活性剂的选择第43页
            2.1.3 助表面活性剂的选择第43页
        2.2 伪三元相图的绘制第43-44页
        2.3 影响微乳形成的主要因素第44-51页
            2.3.1 油相对微乳形成的影响第44页
            2.3.2 表面活性剂对微乳形成的影响第44-45页
            2.3.3 助表面活性剂对微乳形成的影响第45-46页
            2.3.4 Km值对微乳形成的影响第46页
            2.3.5 水相pH值对微乳形成的影响第46-47页
            2.3.6 水相中离子强度对微乳形成的影响第47-48页
            2.3.7 抗氧化剂对微乳形成的影响第48-50页
            2.3.8 制备方法对微乳形成的影响第50-51页
                2.3.8.1 分散强度第50页
                2.3.8.2 混合顺序第50-51页
        2.4 最优空白微乳处方的确定第51-52页
        2.5 含药微乳的制备第52-53页
    3 讨论第53-55页
    4 本章小结第55页
    参考文献第55-57页
第三章 叶酸受体介导β-榄香烯主动靶向微乳的设计第57-68页
    1 仪器与试药第57-58页
    2 方法与结果第58-65页
        2.1 1,2-油酰基磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇-叶酸的合成第58页
            2.1.1 合成路线设计第58页
            2.1.2 合成工艺与方法第58页
        2.2 合成产物的结构表征及鉴定第58-65页
            2.2.1 薄层色谱分析第58-59页
            2.2.2 紫外分析第59页
            2.2.3 差示扫描量热法第59页
            2.2.4 红外吸收光谱检测第59-61页
            2.2.5 核磁共振氢谱第61-63页
            2.2.6 质谱第63页
            2.2.7 X-ray衍射第63-64页
            2.2.8 扫描电子显微镜第64-65页
        2.3 叶酸受体介导的β-榄香烯靶向微乳的制备第65页
    3 讨论第65-66页
    4 本章小结第66页
    参考文献第66-68页
第四章 β-榄香烯微乳及主动靶向微乳的制剂学研究第68-84页
    1 仪器与试药第68页
    2 方法与结果第68-80页
        2.1 微乳理化性质的研究第68-72页
            2.1.1 粒径的测定第68-69页
            2.1.2 载药量对粒径的影响第69-71页
            2.1.3 可稀释度对微乳粒径的影响第71-72页
        2.2 Zeta点位的测定第72-73页
        2.3 表面张力的测定第73-74页
        2.4 电导率的测定第74-75页
        2.5 粘度的测定第75-76页
        2.6 折光率的测定第76-77页
        2.7 pH值的测定第77页
        2.8 微乳的鉴别及微乳类型的鉴别第77-78页
        2.9 形态学考察第78页
        2.10 稳定性考察第78-80页
    3 讨论第80-81页
    4 本章小结第81-82页
    参考文献第82-84页
第五章 β-榄香烯微乳的体外释放度和安全性研究第84-93页
    1 仪器与试药第84页
    2 方法与结果第84-90页
        2.1 膜扩散透析法考察β-榄香烯微乳的释药行为第84-85页
        2.2 释放度的测定第85页
        2.3 载药微乳的含量测定第85-88页
            2.3.1 色谱分析条件确立第85页
            2.3.2 标准曲线与方法学研究第85-86页
            2.3.3 微乳的含量测定第86页
            2.3.4 精密度考察第86-87页
            2.3.5 回收率实验第87页
            2.3.6 不同粒径微乳体外释药行为考察第87-88页
        2.4 β-榄香烯微乳安全性初步考察第88-90页
            2.4.1 β-榄香烯微乳的溶血性考察第88-90页
                2.4.1.1 溶血性实验第88页
                2.4.1.2 载药微乳的制备第88页
                2.4.1.3 实验方法第88-89页
                2.4.1.4 微乳的溶血性考察结果第89-90页
    3 讨论第90页
    4 本章小结第90页
    参考文献第90-93页
第六章 β-榄香烯微乳及主动靶向微乳的药动学研究第93-106页
    1 仪器与试药第93-94页
    2 方法与结果第94-103页
        2.1 β-榄香烯对照品的配制第94页
        2.2 大鼠血浆中β-榄香烯分析方法的建立第94页
            2.2.1 色谱分析条件第94页
            2.2.2 血浆样品预处理第94页
        2.3 血浆样品分析方法确证第94-98页
            2.3.1 系统适用性实验第94页
            2.3.2 方法专属性实验第94-95页
            2.3.3 标准曲线和线性范围第95-96页
            2.3.4 检测限与定量限第96页
            2.3.5 提取回收率第96-97页
            2.3.6 方法回收率第97页
            2.3.7 精密度和准确度第97-98页
        2.4 试验方案第98页
            2.4.1 β-榄香烯市售制剂的预处理第98页
            2.4.2 β-榄香烯微乳的制备第98页
            2.4.3 给药方案与血浆样品采集第98页
        2.5 血浆浓度测定结果第98-99页
        2.6 平均血药浓度-时间曲线第99-102页
        2.7 统计矩拟合统计结果第102-103页
    3 讨论第103-104页
    4 本章小结第104页
    参考文献第104-106页
第七章 不同粒径叶酸靶向β-榄香烯微乳的体内分布研究第106-121页
    1 仪器与试药第106-107页
    2 方法与结果第107-118页
        2.1.荷瘤BALB/c裸鼠模型的建立第107页
        2.2 给药方案第107页
        2.3 各组织中β-榄香烯含量测定的方法第107-113页
        2.4 小鼠体内组织分布实验第113-118页
    3 讨论第118-119页
    4 本章小结第119页
    参考文献第119-121页
第八章 叶酸受体介导β-榄香烯微乳细胞毒性及机制研究第121-135页
    1 仪器与试药第121-122页
    2 方法与结果第122-131页
        2.1 培养液配制及细胞培养第122-123页
            2.1.1 培养液配制第122页
            2.1.2 细胞培养与传代第122-123页
        2.2 普通微乳与靶向微乳的体外细胞毒实验第123-124页
            2.2.1 MTT溶液的配制第123页
            2.2.2 MTT方法测定结果第123-124页
            2.2.3 半数致死浓度计算第124页
        2.3 细胞摄取实验第124-129页
            2.3.1 样品的处理第124页
            2.3.2 β-榄香烯分析方法的确立第124-127页
                2.3.2.1 色谱条件第124页
                2.3.2.2 方法专属性第124-125页
                2.3.2.3 标准曲线第125-126页
                2.3.2.4 精密度第126页
                2.3.2.5 提取回收率第126-127页
            2.3.3 细胞摄取设计第127-129页
                2.3.3.1 加药后孵育时间对细胞摄取量的影响第127-128页
                2.3.3.2 游离叶酸加入对细胞摄取量的影响第128-129页
                2.3.3.3 加药后孵育温度对细胞摄取量的影响第129页
        2.4 流式细胞仪测定叶酸介导微乳细胞结合与内化第129-131页
    3 讨论第131-132页
    4 本章小结第132页
    参考文献第132-135页
全文结论第135-138页
创新点与展望第138-139页
    一、论文创新点第138页
    二、论文后期研究展望第138-139页
致谢第139-140页
攻读博士学位期间发表论文情况第140-141页
附件第141-150页

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