| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 骨质疏松症的简介 | 第14-16页 |
| 1.1.1 概念 | 第14页 |
| 1.1.2 临床表现 | 第14-15页 |
| 1.1.3 流行情况 | 第15-16页 |
| 1.2 原发性骨质疏松症的国内外研究进展 | 第16-22页 |
| 1.2.1 概念 | 第16页 |
| 1.2.2 发病机制 | 第16-18页 |
| 1.2.3 临床表现 | 第18-19页 |
| 1.2.4 临床相关指标检测 | 第19-20页 |
| 1.2.5 骨质疏松症的防治 | 第20-22页 |
| 1.3 肾性骨营养不良的国内外研究现状 | 第22-25页 |
| 1.3.1 概念 | 第22页 |
| 1.3.2 发病机制 | 第22-23页 |
| 1.3.3 临床表现 | 第23页 |
| 1.3.4 临床相关指标检测 | 第23-24页 |
| 1.3.5 肾性骨营养不良的防治 | 第24-25页 |
| 1.4 骨质疏松症的研究小结 | 第25-26页 |
| 1.5 肾素-血管紧张素系统的国内外研究进展 | 第26-27页 |
| 1.5.1 认识肾素-血管紧张素系统 | 第26页 |
| 1.5.2 经典的 RAS | 第26页 |
| 1.5.3 局部组织 RAS | 第26-27页 |
| 1.6 本课题的研究内容及意义 | 第27-28页 |
| 第二章 RAS 在老龄诱导骨质疏松症进程中的生物学作用 | 第28-45页 |
| 2.1 前言 | 第28页 |
| 2.2 材料 | 第28-31页 |
| 2.2.1 试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 药品 | 第29页 |
| 2.2.3 主要耗材 | 第29-30页 |
| 2.2.4 仪器与设备 | 第30页 |
| 2.2.5 主要试剂配制 | 第30-31页 |
| 2.2.6 实验动物 | 第31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-39页 |
| 2.3.1 实验分组 | 第31页 |
| 2.3.2 造模方法 | 第31-32页 |
| 2.3.3 样本收集 | 第32页 |
| 2.3.4 骨形态学检测 | 第32-33页 |
| 2.3.5 骨参数的测定 | 第33页 |
| 2.3.6 总 RNA 提取 | 第33-34页 |
| 2.3.7 制备 cDNA | 第34页 |
| 2.3.8 聚合酶链反应 | 第34-36页 |
| 2.3.9 DNA 凝胶电泳 | 第36页 |
| 2.3.10 总蛋白提取 | 第36-37页 |
| 2.3.11 Broadford 测蛋白浓度 | 第37页 |
| 2.3.12 蛋白印迹法 | 第37-39页 |
| 2.3.13 统计学处理 | 第39页 |
| 2.4 结果 | 第39-43页 |
| 2.4.1 骨形态学 | 第39页 |
| 2.4.2 骨量 | 第39-40页 |
| 2.4.3 骨特异性基因的表达 | 第40-41页 |
| 2.4.4 RAS 组分的基因表达 | 第41-42页 |
| 2.4.5 AngII 的蛋白表达 | 第42-43页 |
| 2.5 讨论 | 第43-45页 |
| 第三章 单侧输尿管结扎诱导肾脏病理变化的研究 | 第45-54页 |
| 3.1 前言 | 第45-46页 |
| 3.2 材料 | 第46页 |
| 3.2.1 试剂 | 第46页 |
| 3.2.2 药品 | 第46页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第46页 |
| 3.2.4 实验动物 | 第46页 |
| 3.3 方法 | 第46-49页 |
| 3.3.1 实验分组 | 第46-47页 |
| 3.3.2 造模方法 | 第47页 |
| 3.3.3 样本收集 | 第47页 |
| 3.3.4 血清指标检测 | 第47页 |
| 3.3.5 肾形态学检测 | 第47页 |
| 3.3.6 总 RNA 提取 | 第47-48页 |
| 3.3.7 制备 cDNA | 第48页 |
| 3.3.8 引物合成 | 第48页 |
| 3.3.9 实时定量 PCR | 第48-49页 |
| 3.3.10 统计学处理 | 第49页 |
| 3.4 结果 | 第49-52页 |
| 3.4.1 血清生化指标 | 第49页 |
| 3.4.2 Masson’s Trichrome 染色 | 第49-50页 |
| 3.4.3 维生素 D 代谢酶的基因表达 | 第50-51页 |
| 3.4.4 钙主动转运蛋白的基因表达 | 第51-52页 |
| 3.5 讨论 | 第52-54页 |
| 第四章 RAS 在肾损伤诱导骨质疏松症进程中的生物学作用 | 第54-65页 |
| 4.1 前言 | 第54-55页 |
| 4.2 材料 | 第55页 |
| 4.2.1 试剂 | 第55页 |
| 4.2.2 药品 | 第55页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第55页 |
| 4.2.4 实验动物 | 第55页 |
| 4.3 方法 | 第55-57页 |
| 4.3.1 实验分组 | 第55页 |
| 4.3.2 造模方法 | 第55页 |
| 4.3.3 样本收集 | 第55-56页 |
| 4.3.4 血清指标检测 | 第56页 |
| 4.3.5 骨形态学检测 | 第56页 |
| 4.3.6 总 RNA 提取 | 第56页 |
| 4.3.7 制备 cDNA | 第56页 |
| 4.3.8 引物合成 | 第56-57页 |
| 4.3.9 实时定量 PCR | 第57页 |
| 4.3.10 总蛋白提取 | 第57页 |
| 4.3.11 Broadford 测蛋白浓度 | 第57页 |
| 4.3.12 蛋白印迹法 | 第57页 |
| 4.3.13 统计学处理 | 第57页 |
| 4.4 结果 | 第57-63页 |
| 4.4.1 血清生化指标 | 第57-58页 |
| 4.4.2 骨形态结构 | 第58-59页 |
| 4.4.3 成骨细胞特异性基因表达 | 第59-60页 |
| 4.4.4 破骨细胞特异性基因表达 | 第60-61页 |
| 4.4.5 Opg/Rankl 系统 | 第61-62页 |
| 4.4.6 RAS 组分的蛋白表达 | 第62-63页 |
| 4.5 讨论 | 第63-65页 |
| 第五章 结论与展望 | 第65-66页 |
| 5.1 结论 | 第65页 |
| 5.2 展望 | 第65-66页 |
| 英文缩写词检索表 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 在读期间公开发表的论文、参与科研项目及取得成果 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
