中文摘要 | 第4-6页 |
英文摘要 | 第6-8页 |
英文缩写与注释 | 第11-13页 |
第一章 前言 | 第13-15页 |
第二章 实验研究 | 第15-24页 |
2.1 材料 | 第15-16页 |
2.1.1 细胞株 | 第15页 |
2.1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
2.2 主要仪器 | 第16页 |
2.3 主要试剂的配制 | 第16-18页 |
2.4 实验方法 | 第18-23页 |
2.4.1 细胞复苏、培养、换液、传代、冻存 | 第18-19页 |
2.4.2 实验分组 | 第19-20页 |
2.4.3 倒置相差显微镜下观察细胞生长状态 | 第20页 |
2.4.4 MTT法测定同一时间各组细胞活性 | 第20页 |
2.4.5 MTT法测定不同时间各组细胞活性 | 第20-21页 |
2.4.6 Western Blot测定各组细胞α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)表达 | 第21-23页 |
2.5 统计学方法 | 第23-24页 |
第三章 结果 | 第24-29页 |
3.1 倒置相差显微镜下观察各组细胞形态变化 | 第24-25页 |
3.2 MTT法检测各组细胞活性结果 | 第25-27页 |
3.3 Western blot检测各组细胞α-SMA表达量 | 第27-29页 |
第四章 讨论 | 第29-35页 |
4.1 酒精性肝病的治疗现状 | 第29-30页 |
4.2 乙醛诱导体外HSC-T6增殖模型建立 | 第30-31页 |
4.3 乙醛对肝星状细胞的影响 | 第31-32页 |
4.3.1 肝星状细胞的活化机制 | 第31-32页 |
4.3.2 实验室条件下乙醛对离体HSC-T6细胞的影响 | 第32页 |
4.4 枳棋子水提取液对活化的肝星状细胞的影响 | 第32-34页 |
4.4.1 枳棋子对肝纤维化的防治作用研究 | 第32-33页 |
4.4.2 实验室条件下枳棋子对离体活化的HSC-T6细胞的影响 | 第33-34页 |
4.5 小结 | 第34-35页 |
第五章 结论 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-39页 |
综述 | 第39-48页 |
参考文献 | 第44-48页 |
致谢 | 第48页 |