| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-27页 |
| 1.1 植物先天免疫系统 | 第13-17页 |
| 1.1.1 PTI | 第13-15页 |
| 1.1.1.1 细菌鞭毛蛋白激发植物免疫反应 | 第13-14页 |
| 1.1.1.2 真菌几丁质激发植物免疫反应 | 第14-15页 |
| 1.1.2 ETI | 第15-17页 |
| 1.2 类病斑突变体研究进展 | 第17-24页 |
| 1.2.1 影响类病斑发生的途径 | 第17-18页 |
| 1.2.2 类病斑基因参与免疫应激反应的信号通路 | 第18-20页 |
| 1.2.2.1 ROS信号通路 | 第18-19页 |
| 1.2.2.2 茉莉酸和乙烯信号通路 | 第19页 |
| 1.2.2.3 一氧化氮（NO）信号途径 | 第19-20页 |
| 1.2.2.4 水杨酸信号途径 | 第20页 |
| 1.2.3 水稻类病斑突变体基因的克隆 | 第20-24页 |
| 1.3 泛素-蛋白酶体系统 | 第24-27页 |
| 1.3.1 泛素-蛋白酶体系统介导靶蛋白降解过程 | 第24-25页 |
| 1.3.2 CULLIN3生理功能研究进展 | 第25-27页 |
| 第二章 lm-ZH表型鉴定及基因克隆 | 第27-45页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.1.2.1 水稻种植与管理 | 第27页 |
| 2.1.2.2 遗传分析 | 第27-28页 |
| 2.1.2.3 DAB染色 | 第28页 |
| 2.1.2.4 ROS含量测定 | 第28页 |
| 2.1.2.5 稻瘟菌接种 | 第28-29页 |
| 2.1.2.6 白叶枯菌接种 | 第29页 |
| 2.1.2.7 DNA提取 | 第29-30页 |
| 2.1.2.8 RNA提取 | 第30页 |
| 2.1.2.9 第一链cDNA合成 | 第30页 |
| 2.1.2.10 定量PCR | 第30-31页 |
| 2.1.2.11 PCR反应 | 第31页 |
| 2.1.2.12 变性聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第31页 |
| 2.1.2.13 银染 | 第31-32页 |
| 2.1.2.14 基因定位 | 第32页 |
| 2.1.2.15 候选基因分析 | 第32-33页 |
| 2.1.2.16 互补载体构建 | 第33-34页 |
| 2.1.2.17 水稻遗传转化 | 第34-35页 |
| 2.2 结果及分析 | 第35-43页 |
| 2.2.1 lm-ZH类病斑表型鉴定 | 第35-37页 |
| 2.2.2 PAMP诱导ROS积累动态分析 | 第37页 |
| 2.2.3 稻瘟病抗性鉴定 | 第37页 |
| 2.2.4 白叶枯病抗性鉴定 | 第37-39页 |
| 2.2.5 防卫相关基因表达量检测 | 第39页 |
| 2.2.6 lm-ZH的遗传分析 | 第39-40页 |
| 2.2.7 lm-ZH的基因定位 | 第40页 |
| 2.2.8 候选基因分析 | 第40页 |
| 2.2.9 lm-ZH的基因克隆与互补验证 | 第40-42页 |
| 2.2.10 OsCUL3a组成型表达 | 第42-43页 |
| 2.3 小结 | 第43-45页 |
| 2.3.1 lm-ZH表现类病斑表型 | 第43页 |
| 2.3.2 lm-ZH中防卫信号被激活 | 第43-44页 |
| 2.3.3 OsCUL3a负调控水稻细胞死亡和免疫应激反应 | 第44-45页 |
| 第三章 Os CUL3a功能分析 | 第45-60页 |
| 3.1 材料与方法 | 第45-50页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第45-50页 |
| 3.1.2.1 水稻原生质体瞬时表达系统 | 第45-46页 |
| 3.1.2.2 烟草瞬时表达系统 | 第46页 |
| 3.1.2.3 总蛋白提取 | 第46页 |
| 3.1.2.4 Western blotting | 第46-47页 |
| 3.1.2.5 亚细胞定位 | 第47页 |
| 3.1.2.6 荧光素酶互补成像分析 | 第47页 |
| 3.1.2.7 双分子荧光互补 | 第47页 |
| 3.1.2.8 酵母双杂交 | 第47-48页 |
| 3.1.2.9 免疫共沉淀 | 第48页 |
| 3.1.2.10 MG132抑制OsNPR1降解实验 | 第48页 |
| 3.1.2.11 OsNPR1体内降解实验 | 第48页 |
| 3.1.2.12 CRISPR双突变体构建 | 第48-50页 |
| 3.2 结果与分析 | 第50-56页 |
| 3.2.1 OsCUL3a与OsRBX1a/b在体内互作 | 第50-52页 |
| 3.2.2 OsCUL3a和OsRBX1a/b的亚细胞定位 | 第52页 |
| 3.2.3 OsCUL3a与OsNPR1在体内互作 | 第52-53页 |
| 3.2.4 OsNPR1由 26S蛋白酶体途径降解 | 第53-55页 |
| 3.2.5 OsCUL3a在水稻体内介导OsNPR1的降解 | 第55-56页 |
| 3.2.6 oscul3a/osnpr1表型鉴定 | 第56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-60页 |
| 3.3.1 OsCUL3a组装OsRBX1a或OsRBX1b形成CULLIN-Ring类E3泛素连接酶 | 第56-58页 |
| 3.3.2 OsCUL3a参与调控水稻免疫应激反应 | 第58页 |
| 3.3.3 OsNPR1正向调控水稻细胞死亡和免疫应激反应 | 第58-60页 |
| 第四章 全文结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 作者简历 | 第72页 |
