| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-15页 |
| 1.1 课题来源、研究的目的和意义 | 第11-13页 |
| 1.2 国内外研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2.1 国外研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2.2 国内研究概况 | 第14页 |
| 1.3 论文研究的主要内容 | 第14-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-25页 |
| 2.1 实验材料及仪器设备 | 第15-19页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第15页 |
| 2.1.2 主要仪器与试剂 | 第15-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-25页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第19-20页 |
| 2.2.2 细胞蛋白提取 | 第20页 |
| 2.2.3 Western blot | 第20页 |
| 2.2.4 细胞免疫荧光染色 | 第20-21页 |
| 2.2.5 MTT细胞增殖实验 | 第21页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测细胞周期 | 第21-22页 |
| 2.2.7 衰老相关 β 半乳糖甘酶染色 | 第22页 |
| 2.2.8 细胞转染 | 第22-23页 |
| 2.2.9 免疫共沉淀实验 | 第23-24页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第24-25页 |
| 第三章 结果 | 第25-42页 |
| 3.1 SEA抑制LX-2 细胞的肝纤维化相关蛋白的表达 | 第25-26页 |
| 3.2 SEA诱导LX-2 细胞衰老 | 第26-29页 |
| 3.2.1 SEA对LX-2 细胞衰老相关 β 半乳糖甘酶染色的影响 | 第26-27页 |
| 3.2.2 SEA对LX-2 细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.3 SEA对LX-2 细胞周期的影响 | 第28-29页 |
| 3.3 SEA通过STAT3-p53-p21通路促进LX-2 细胞衰老 | 第29-36页 |
| 3.3.1 SEA促进LX-2 细胞衰老依赖于p53 | 第29-31页 |
| 3.3.2 SEA促进LX-2 细胞衰老依赖于STAT3 | 第31-35页 |
| 3.3.3 SOCS3通过与p53相互结合参与到SEA诱导的LX-2 细胞衰老过程中 | 第35-36页 |
| 3.4 SEA通过FoxO3a-SKP2-p27通路促进LX-2 细胞衰老 | 第36-42页 |
| 3.4.1 SEA使LX-2 细胞p27表达上调 | 第36-37页 |
| 3.4.2 FoxO3a参与SEA诱导LX-2 细胞衰老 | 第37-38页 |
| 3.4.3 p27 siRN A抑制SEA诱导的LX-2 细胞衰老 | 第38-40页 |
| 3.4.4 过表达SKP2蛋白抑制LX-2 细胞衰老 | 第40-42页 |
| 第四章 讨论 | 第42-47页 |
| 第五章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 综述 | 第53-71页 |
| 综述参考文献 | 第63-71页 |
| 英文缩写词表 | 第71-73页 |
| 在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第73-74页 |
| A：在国内外刊物上发表的论文 | 第73页 |
| B：所参加的项目 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
