| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-20页 |
| 1.1 种子发育过程中的蛋白质组研究 | 第13-15页 |
| 1.1.1 组织分化阶段的关键蛋白 | 第13-14页 |
| 1.1.2 与胚和胚乳发育相关的蛋白 | 第14-15页 |
| 1.1.3 成熟干燥阶段的关键蛋白 | 第15页 |
| 1.2 种子休眠相关的蛋白质组研究 | 第15-17页 |
| 1.3 种子萌发过程中的蛋白质组研究 | 第17-19页 |
| 1.3.1 种子吸胀相关的蛋白质 | 第17页 |
| 1.3.2 种子代谢相关的蛋白质 | 第17-18页 |
| 1.3.3 种子胚根伸长相关的蛋白质 | 第18页 |
| 1.3.4 种子萌发期间代谢途径的研究 | 第18-19页 |
| 1.4 本研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 第二章 银杏种胚蛋白质双向电泳体系的建立 | 第20-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-22页 |
| 2.1.1 仪器与试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 银杏种胚蛋白提取方法 | 第20-22页 |
| 2.1.3 裂解液浓度 | 第22页 |
| 2.1.4 蛋白上样量 | 第22页 |
| 2.1.5 双向电泳 | 第22页 |
| 2.1.6 染色 | 第22页 |
| 2.1.7 图像扫描与数据分析 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-25页 |
| 2.2.1 不同提取方法所得2-DE图谱的比较 | 第22-23页 |
| 2.2.2 裂解液中不同尿素浓度所得2-DE图谱的比较 | 第23-24页 |
| 2.2.3 不同上样量所得2-DE图谱的比较 | 第24页 |
| 2.2.4 不同分离胶浓度所得2-DE图谱的比较 | 第24-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-27页 |
| 2.3.1 不同蛋白提取方法对2-DE结果的影响 | 第25页 |
| 2.3.2 裂解液中不同尿素浓度对2-DE结果的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.3 不同蛋白上样量对2-DE结果的影响 | 第26页 |
| 2.3.4 不同分离胶浓度对2-DE结果的影响 | 第26-27页 |
| 第三章 不同发育状态银杏种胚差异蛋白质组学的研究 | 第27-59页 |
| 3.1 材料 | 第27页 |
| 3.2 方法 | 第27-29页 |
| 3.2.1 银杏种胚的分级 | 第27页 |
| 3.2.2 发芽银杏种子胚长的确定 | 第27页 |
| 3.2.3 银杏种胚发芽能力的测定 | 第27页 |
| 3.2.4 蛋白质的提取 | 第27-28页 |
| 3.2.5 蛋白质裂解及定量 | 第28页 |
| 3.2.6 双向凝胶电泳 | 第28页 |
| 3.2.7 染色 | 第28页 |
| 3.2.8 质谱分析 | 第28-29页 |
| 3.3 结果与分析 | 第29-52页 |
| 3.3.1 发芽银杏种子胚长的确定 | 第29-30页 |
| 3.3.2 银杏种胚体外培养 | 第30-31页 |
| 3.3.3 不同发育时期表达差异蛋白双向电泳图谱分析 | 第31页 |
| 3.3.4 不同发育时期表达差异蛋白点的质谱鉴定结果 | 第31-49页 |
| 3.3.5 不同发育时期表达差异蛋白点的功能分类 | 第49-51页 |
| 3.3.6 胁迫与防御相关差异蛋白动态变化 | 第51-52页 |
| 3.4 讨论 | 第52-59页 |
| 3.4.1 参与蛋白合成与折叠相关蛋白 | 第52-53页 |
| 3.4.2 DNA与RNA合成相关蛋白 | 第53-54页 |
| 3.4.3 胁迫与防御相关的蛋白 | 第54-55页 |
| 3.4.4 与代谢相关的蛋白 | 第55-56页 |
| 3.4.5 贮藏蛋白 | 第56-57页 |
| 3.4.6 运输相关的蛋白 | 第57页 |
| 3.4.7 种胚生长相关蛋白 | 第57-58页 |
| 3.4.8 银杏特有功能蛋白 | 第58页 |
| 3.4.9 未知蛋白 | 第58-59页 |
| 第四章 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第71页 |
