| 英文缩写表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一部分 HMGB1对小鼠DCreg作用的量效-时效关系 | 第17-33页 |
| 材料与方法 | 第17-23页 |
| 一、主要试剂 | 第17-18页 |
| 二、主要仪器 | 第18-19页 |
| 三、实验方法与分组 | 第19-23页 |
| 1.小鼠脾脏调节性树突状细胞的提取和检测方法 | 第19-22页 |
| 2.流式细胞检测 | 第22页 |
| 3.实验分组及IL-1O、IL-12分泌水平检测 | 第22-23页 |
| 4.流式细胞仪检测HMGB1刺激后小鼠DCreg表面共刺激分子表达 | 第23页 |
| 四、统计学处理 | 第23页 |
| 结果 | 第23-28页 |
| 一、CD11c~(low)CD45RB~(high)DCreg在流式细胞仪的典型表现 | 第23-24页 |
| 二、HMGB1刺激与小鼠DCreg分泌IL-10、IL-12水平的关系 | 第24-26页 |
| 1.HMGB1刺激与DCreg分泌IL-10、IL-12水平变化的时间-效应关系 | 第24-25页 |
| 2.HMGB1刺激与DCreg分泌IL-10、1L-12水平变化的剂量-效应关系 | 第25-26页 |
| 三、HMGB1刺激与DCreg表面共刺激分子表达 | 第26-28页 |
| 讨论 | 第28-32页 |
| 结论 | 第32-33页 |
| 第二部分 HMGB1刺激后CD11c~(low)CD45RB~(high)DCs对T淋巴细胞免疫功能的影响 | 第33-47页 |
| 材料与方法 | 第33-38页 |
| 一、主要试剂 | 第33-35页 |
| 1.效应T细胞提取与培养 | 第33-34页 |
| 2.T细胞激活与增殖 | 第34-35页 |
| 3.ELISA检测试剂盒 | 第35页 |
| 二、主要仪器 | 第35-36页 |
| 三、实验方法 | 第36-38页 |
| 1.小鼠效应T细胞的提取和检测方法 | 第36-37页 |
| 2.T细胞增殖的检测指标及方法 | 第37-38页 |
| 3.T淋巴细胞的漂移分析 | 第38页 |
| 四、统计学处理 | 第38页 |
| 结果 | 第38-42页 |
| 一、预实验检测淋巴细胞数与MTT吸光度值之间的关系 | 第38-39页 |
| 二、HMGB1刺激的DCreg激活脾T淋巴细胞增殖反应的改变 | 第39-40页 |
| 三、HMGB1 刺激后 DCreg 对 T 淋巴细胞的功能性极化（Th1/Th2 漂移）的影响 | 第40-41页 |
| 四、HMGB1刺激的DCreg激活脾T淋巴细胞IL-2表达的改变 | 第41-42页 |
| 讨论 | 第42-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 第三部分 HMGB1对DCreg影响T细胞功能的受体机制 | 第47-60页 |
| 材料与方法 | 第47-50页 |
| 一、主要试剂 | 第47-48页 |
| 1.逆转录-多聚酶链反应(RT-PCR) | 第47-48页 |
| 2.TLR4相关试剂 | 第48页 |
| 3.其他试剂 | 第48页 |
| 二、主要仪器 | 第48-49页 |
| 三、实验方法与分组 | 第49-50页 |
| 1.细胞分组和处理 | 第49-50页 |
| 2.TLR4受体封闭组的处理 | 第50页 |
| 3.RT-PCR法进行检测 | 第50页 |
| 四、统计学处理 | 第50页 |
| 结果 | 第50-56页 |
| 一、HMGB1刺激对DCreg表面TLR4表达的影响 | 第50-52页 |
| 1.流式细胞仪检测TLR4表达情况 | 第50-51页 |
| 2.PCR检测TLR4 mRNA表达 | 第51-52页 |
| 二、封闭FLR4受体后HMGB1刺激对DCreg免疫功能的影响 | 第52-56页 |
| 1.DCreg分泌IL-10、IL-12的变化 | 第52-53页 |
| 2.对T淋巴细胞增殖反应的影响 | 第53-54页 |
| 3.对T细胞功能极化的影响 | 第54-55页 |
| 4.对T淋巴细胞分泌IL-2水平的影响 | 第55-56页 |
| 讨论 | 第56-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 文献综述一 | 第68-77页 |
| 参考文献 | 第72-77页 |
| 文献综述二 | 第77-85页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 攻读博士学位期间发表论文情况 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
